UNIVERSITE DE DAKAR
ECOLE INTER-ETATS DES SCIENCES ET MEDECINE VETERINAIRES
(E. L S. M. V.)
ANNEE 1986
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CON5EILNRICAIN-;--=
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POUR l'ENSEIGNEM
MALGACHE 1
i C. A. MES
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LA FIEVRE DE LA VALLEE DU RIFf :
ENQUETE SEROLOGIQUE
CHEZ LES PETITS RUMIN. ,-.s.\\c,f. ~
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AU NIGER
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THESE
présentée et soutenue publiquement le ] 5 juillet 1986
devant la Faculté de Médecine et de Pharmacie de Dakar
pour obtenir le grade de DOCTEUR VETERINAIRE
(DIPLOME D'ETAT)
par
Mademoiselle Rianatou BADA
née le 27 février 1962 à MARADI (NIGER)
Président du Jury
Monsieur François DIENG,
Professeur à la Faculté de Médecine et de Pharmacie de Dakar
Directeur de Thèse
Monsieur Ayayi Justin AKAKPO,
Professeur Agrégé à l'E.LS.M.V. de Dakar
Membres
Monsieur Alassane SERE,
Professeur à l'E.LS.M.V. de Dakar
Docteur Jean-Pierre DIGOUTE,
Directeur de l'Institut Pasteur de Dakar

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s. GEERl'S •••••• 00 CI ••••• 0 •••••••• 0 •• Ph. D.
Institut de ~édeciœ Tropicale
!'.N'VEPS
Physique et Chimie biologiques et mâ:1icales
F. P1\\TQRE •••
Pro-t:esseur
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Eo:>le Nationale Vétérinaire
N~.13
Patholooie de la Heproduction - Obs~tricnE_
D. TAJ}~~~ER •••••••••••••••••••••• Professeur
F,cole Nationale Vétérinaire
NP.~'TF.:S
Patholoqie des Eguidés
J. L. roJ<::HEr1J'J •••
Professeur
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• • • • • 0






• •
Frole Nationale Vétérinaire
ALFORT
Patholocrie BoYi.~
J. U~XXlANEr e •••• eooo ••• oo ••• oo •• oo. Professeur
Ecole Nationale Vétérinairp,
NPl'lTES
Pathologie générale - Irrmurolooie
M're F. !;]JINTIN-mLONNA ••••••••••••• M.aitre-Assistant agrégée
Ecole rrationale Vétérinaire
p.J.J~RT
Phannacie - Toxicoloqie
G. KECl< ••••
Professeur
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FAX)le Nationale Vétérinaire
LYON
L. EL BARP.! •••••••••••••••••••••••• Maitre de Conférerx:es agrégé
E.N. V. Sirli 'Ihal:et
'l'UNIS
ZOOtechnie - Alilœntation
R. PAP.IGI -nTIJI •••••••••••••••••••• Professeur
Université de Pa:l.oue
ITALIE
R. RIONI ~~PPflU ••••••••••••••••••• Professeur
Tlniversité de Padoue
ITALIE
R. QJZZINATI ••••••••••••••••••••••• Technicien de Lalx>ratoire
Université de Padoue
ITPJ..IE
Y.E. N·1EGEE ••••••••••••••••.•••••••• Haitre-Assistant
Ecole d' Agrommie
Université du Bénin
'l'OOO
*
*
*M:>niteurs conmuns aux deux départerœnts.

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DE DIE
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T R A V AIL.'I 'd.'

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10. Phygigœ et Chimie Biolggigœs et Médicales
Gennain Jérême SAit'i'AJX)G) ••••••• 0 •••••••••• Maitre-Assistant
('-eorges Anicet OUEDRACXD
11::>niteur
Bernard FAYE o.
r.Dniteur
Q • • • • • • • • • • • • 0











• •
11. ZOOtechnie - AlÙll?...ntation
Ahmadou Lamiœ 'NDIAYE •••••••••••••••• < - •• Professeur
Kcx1jo Pierre ABASSA ••••••••••••••• 0 •••••• O1arqé d'enseignerœnt
Certificat Préparatoire aux Etu:1es Vétérinaires (CPEV
LëK1l1i GARBA••••••••••••••••••• li •••••••••• l\\t)niteur
II - P:ERS<NmL VPCP{JWlFE
Biophysique
Béné ~roYE •••••••••••••••••••••••••••• Professeur
Faculté de 14êà.eciœ
et de Pharmacie
UNIVERSITE DE DAKAR
rtre Jacqueliœ PII1JET ••••••••••••••••• Olargœ 0.' enseigneIœnt
Faculté de l'1édeciœ
et de Phannacie
UNIVERSITE DE DAKAR
Alain LEm'1:PI'E ••••• 0.................. Haître-Assistant
Faculté de t·~eciœ
et cl.e Pharrt'acie
UNIVERSITE DE DAKAR
Mme Sylvie GASSN·1A •••••••••••••••••••• 1'.ssistante
FaculW <'1e H{:deciœ
et de PhanP.acie
llf'JIVERSlTE DE DAKAR
Bioclimatologie
Paul NDIAYE ••••••••••••••••••••••••••• !'-""JâÏtre-Assistant
Faculté des J...ettres
et SCierx::es Hurnaiœs
TJNIVERSlTE DE DAKAR
Botanique
GuYJ\\~ ........................... r-".aitre de COnférerres
Faculté r::e Mê::1ecine
et de Phannacie
UNIVEPSITE DE DAKAR
~cx>oomi.e générale
0tInar BEIn'E ••••••••••••••••••••••••••• J1I;aître-Assistant
Faculté des Sciences
Juridiques et Erorx:>miques
UNIVERSI'l'E DE DAKA..~
Ingénieur agrorare
• • • • • • 0
• • • • • • • • • • • • 0
• • • •
DAYA"R
III - PER9:l'.JNET~ Ell J'Us..SION (prévu [XJur I985-B6)
Anatanie pathologique
F. CRES~lJ ••••••
Professeur
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Eoole Nationale Vétérinaire
AI..F'JRI'
Parasitologie
Ph. OORCHIES •••••• 0 •••••••• 0." •••••••• Professeur
Ecole Nationale Vétérinaire
'IOULOUSE
1-1. ~lC •••
Professeur
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• •
F..role Nationale Vétérinaire

A MON PERE
Pour les sacrifices consentis pour me mettre sur
le chemin qui m'a conduit aujourd'hui ici.
J'aurai toujours besoins de tes conseils.
Accepte ce modeste travail comme témoignage de
mon affection filiale.
A MA MERE
Très tôt arrachée à notre affection.
Que ton âme repose en paix.
A MA BELLE-MERE
Tu nous à adopté sans faille.
Tu es
notre seconde mère.
Profonde reconnaissance.
A MON GRAND PERE PATERNEL
In mémorium.
A MES AUTRES GRANDS PARENTS
Pour une longue vie.
A MES TANTES ET ONCLES
Merci pour ce que vous m'avez fait.
A MES FRERES ET SOEURS
Cousins et Cousines
Pour vous exhorter à mieux faire.
A GEORGES ANICET
Une étape est franchie.
Ton amour, ta compréhension et ton courage nous
permettront de surmonter les étapes ultérieures.

A
ECOLE DJTER-eI'ATS
DES SCIENCFS ET HSOECINE
LISTE CU P~ Fl~SEICW\\NT rouR
wrEP.IN1<IRES DE DAKAR
L'~fL~ UNIVERSITAIRE IgeS-I9P:6
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1 - PE~ A Pf.,Elli TFJ.~
1. Anatanie-Histolooie-lPl,lJr;JOlggie
Charles Kondi AGBA••••••••••••••••••••••••••••••••• F1aitre de Cbnférences
~tne r'7arie-Fb~e Rûfe1AND •••••••••••••••••••••••••••••• l\\Ssistante de Recherches
Jean-!'I!arie Vianœy AKAYEZU •••••••••••••••••••••••• Assistant
r~.dou SALEY ••••••
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2. Chirurgie - PeDrodoction
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3. Fron:xnie - Gestion
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Professeur
4. Hyqièœ et Il'k:lustrie des Denrées Alimentaires d'Oriqiœ AniInale (HIDJIOA)
~aIlC.'J SEmI Ill. '0 0 III ••• III • 0 • III • III 0 Cl • III 0 •• III • 0 •• 0 III III III III III 0 0 III III III Maitre-J\\'ssistant
Serge I.z..Z\\PI...MC~•••••• 0 0 III III • 0 • III III III ••• 1) III a _ •• III •• , III III III •• 0 • Assistant
Blaise OUA'ITAFE
Poniteur
5. ~1icrobiologie - Irnnumlocrie - Patlx>logie Infectieuse
Justin. 'P._ya.yi .Al<At<ro •
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Maitre de COnféreœes
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Emmanuel KOUASSI .o •••• o.o ••• o •••••• o ••• o •••• ~o •••• Assistant
Pierre OOmpR.~...J O. 0 0 •••••• 0 0 •• 0 ••.•.• 0 • 0 •• 0 0 • 0 ••••••• Assistant de RechPIches
r1l1e RianatOl RADA •• CI • 0 • 0 •• 0 0 0 0 ••••• (t 0 •• 0 0 • 0 0 ••••• rbnitrice
6. Parasitolooie - Malaè.ies Paras!tai!:es - ZOOlOGie
louis Joseph PANQJI ••••••••••••••••••••••••••••••• r':aitre-Assistant
JeaI1. Bum •.•
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Ibrahirna. NIAHADIO ••••••••••••••••••••••••••••••••• t'Dniteur
. Jean IKOLF-.KOO··OU •••••••••••••••••••••••••••••••••• 'bniteur
7. Patlx>logie F'1édicale - P-natoMie Pat.lx>lc.:>qiaue [.; Clinique Ambulante
Théodore .ALOGNnU:JtTA ••••••••••••••••••••••••••••• 0 r-1aitre-Assistant
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Mpé Augustin DE1~ELE
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Frëll'ÇOis Mél::ayo A'9IOLA •••••••••••••••••••••••
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r-,eorges .Z\\nicet OUEDRP4JGJ •••••••••••••.•••••••••••• r-'bniteur t
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9. Physiologie - Tbérapeutique - pharrnacodynani...§:
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Harnidou OOLY •
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lit. 0
o. ~niteur
... / ...

A YACINE NDIAYE
Ta perte subite nous a fortement abattu.
Que la terre te soit légère.
A MES AMIES du Lycée et à DAKAR.
A MES CAMARADES et AMIS à L'E.I.S.M.V.
HORTENSE, BLAISE, EL HADJ,
BONOU, TOURE, DEMBELE.
Pour le renforcement de nos relations.
A MES COMPAGNONS de la
e
13
promotion
Meilleurs souvenirs.
A MES CADETS :
BALI, JULES, ANDRE, WILLIAM, SALIFOU.
Du courage !
A tous les VETERINAIRES NIGERIENS
Pour une franche collaboration.
A tous les ENSEIGNANTS qui ont 'contribué à ma formation.
A tous ceux qui m'ont aidée dans la réalisation de ce
travail.
A mon pays LE NIGER.
1
A mon pays hôte le SENEGAL.
En souvenir de la Téranga.

A NOS MAITRES ET JUGES
--------------------------
--------------------------
A MONSIEUR FRANCOIS DIENG
Vous avez accepté avec un manifeste plaisir la
présidence de notre jury de Thèse.
Hommage respectueux.
A MONSIEUR AYAYI JUSTIN AKAKPO
Vous nous avez inspiré ce travail et vous l'avez
guidé avec une entière disponibilité.
Votre souci du travail
b1en fait sera le plus
vivant souvenir que nous garderons de vous.
Sincères remerciements.

A MONSIEUR ALASSANE SERE.
Malgré vos multiples occupations, vous avez voulu
avec plaisir juger ce travail.
Profonde gratitude.
A MONSIEUR JEAN-PIERRE DIGOUTE
Nous sommes très sensibles à l'honneur que vous
nous faites en acceptant de juger notre travail.
Profonde reconnaissance.

Nos
REMERCIEMENTS
------------------
- Aux Docteurs BORNAREL et SARRADIN
Votre aide a été diun grand apport pour la réalisa-
tion de ce travail.
- A tout le personnel du Département de MIPI
- Au Docteur SALUZZO
Pour nous avoir assuré un encadrement sans faille
durant notre stage
à lilnstitut Pasteur de Dakar.
- Au Docteur SAMA SALIFOU : Directeur du laboratoire central
d'élevage de Niamey
Pour l'aide que vous miavez apportŒet liaimable
accueil que vous miavez toujours réservé.
- Aux chefs et personnels des Services Départementaux
d'Elevage de Zinder, Diffa~ Maradi, Dosso et Tahoua.
Pour m'avoir beaucoup facilité cette tâche.

"Par délibération, la Faculté et l'Ecole ont
décidé que les opinions émises dans les dissertations qui
leur seront présentées, doivent être considérées comme propres
à leurs auteurs et qu'elles n'entendent leur donner aucune
approbation ni improbation".

§§§§§§§§§§§§

PLA N
-------
-------
INTRODUCTION
PREMIERE PARTIE : GENERALITES SUR LA FIEVRE DE LA VALLEE
DU RIFT (FVR)
CHAPITRE l : Définition - Historique - Espèces
affectées - Importance et Répartition
géographique.
1.1 - Définition
1.2 - Historique
1.3 - Espèces affectées
1.4 - Importance
1.5 - Répartition géographique.
CHAPITRE II : L'agent infectieux : le virus
II.1 - Propriétés physico-chimiques
II.1.1 - Morphologie - Structure - biochimie
II.1.2 - Résistance (Résistance à la
(
température
(Stabilité dans l'air
(Résistance aux agents
(
chimiques.
II.2 - Culture du virus
II.2.1 - In vivo
II.2.2 - In ·ovo
II.2.3 - Sur culture cellulaire.
II.3 - Propriétés biologiques
II.3.1 - Pouvoir pathogène
- des souches sauvages
- des souches neurotropes
II.3.2 - Pouvoir antigène et Immunogène.
CHAPITRE III : Epidémiologie
111.1 - Epidémiologie analytique
î;.
111.1.1
So»poos je contagion
111.1.2 - Réceptivité sensibilité
111.1.3 - Mode de transmission.
111.2 - EPidémiologie synthétique
111.2.1 - Evolution dans le temps et
l'espace
111.2.2 - Persistance
- réservoirs de virus
- foyers silencieux.
CHAPITRE IV : Diagnostic
IV.1 - Diagnostic sur le terrain
IV.1.1 - Diagnostic épldémiologique
IV.1.2 - Diagnostic clinique
IV.1.3 - Diagnostic nécropsique.

IV.2 - Diagnostic expérimental: au Labo
IV.2.1 - Diagnostic histopathologique
IV.2.2.~ Mise en évidence du virus et de
son antigène
IV.2.3 - Mise en évidence des Anticorps:
Sérologie.
DEUXIEME PARTIE : ENQUETE SEROLOGIQUE AU NIGER
CHAPITRE l
- Etude du milieu
1.1 - Le milieu physisque
1.2 - Liélevage au NIGER
-,!":
1.2.1 - Les régions diélevages
1.2.1.1 - La zone pastorale
I.2.1.2 - La zone centrale
1.2.1.3 ~ La zone agricole
1.2.2 - Les modes diélevage
1.2.2.1 - L'élevage secondaire
1.2.2.2 - L'élevage transhumant
1.2.2.3 - Liélevage nomade
1.2.2.4 - L'élevage moderne
1.2.3 - Les espèces animales
1.2.3.1 - Les bovins
1.2.3.2 - Les ovins
1.2.3.2.1 - Moutons à laine
1.2.3.2.2 - Moutons à poils.
1.2.3.3 - Les caprins
1.2.3.4 - Les camelins
1.2.4 - Importance économique de l'élevage
I.2.5 - Etat sanitaire du cheptel ovin et
caprin
1.2.5.1 ~ Maladies d'origine microbien-
ne
1.2.5.2 - Maladies d'origine virale
1.2.5.3 - Affections diorigine parasi-
taire
1.2.5.4 - Maladies nutritionnelles.
CHAPITRE II - Enquête sur la FVR au NIGER
II.1 - Enquête clinique
II.2 - Enqupte sérologique.

II.2.1 = Matériels et méthode
II.2.1.1 - Le sang et les sérums
II.2.1.2 - Les antigènes
II. 2.1. 3 .'~ Les Immunoglobulines marquées
II.2.1.4 ~ Méthode sérologique
II.2.1.5 = Méthode statistique
II.2.2 - Résultats
II.2.2.1 ~ Les résultats par localité
et d~ensemble
II.2.2.2 ~ Les variations selon les
localités
II.2.2.3 ~ Les variations selon les
espèces
II.2.2.4 = Titres des sérums positifs
vis~à~vis de liantigène FVR.
CHAPITRE III - Discussions
111.1 - Matériels et Méthode
111.1.1.- Matériels
111.1.2 = La Méthode
111.2 - Les résultats
Conclusion.
TROISIEME PARTIE : METHODES DE LUTTE ET MISE EN OEUVRE AU NIGER
CHAPITRE l
: Méthodes générales de lutte
1.1 - La prophylaxie médicale
1.1.1 - L'i~nunisation passive
1.1.2 ~ L'immunisation active
la vacci-
nation
1.1.2.1 ~ Considérations générales
1.1.2.2 = Les vaccins disponibles
1.1.2.2.1 - Le vaccin atténué
1.1.2.2.2 = Les vaccins inactivés
contre la FVR
~ à usage vétérinaire
-
à usaga humain
1.1.2.3 - Indications pour lVemploi
1.2 - Prophylaxie sanitaire
1.2.1 = Lutte contre les insectes
1.2.1.1 = Mesures d'urgence
1.2.1.2 = Mesures de lutte possibles
en périodes inter-épizooti-
ques

1.2.1.2.1- Application diinsec-
ticides de contact à effet
rernanent
1.2.1.2.2 - Utilisation de larvi~
cides
1.2.2 ~ Lutte contre la maladie
1.2.2.1 - Les travaux dYaménagement
de lienvironnement
1.2.2.2 - Abattage des animaux infec-
tés.
CHAPITRE II : Mise en oeuvre au NIGER
II.1 - Prophylaxie sanitaire
II.1.1 ~ La surveillance
II.1.2
La lutte contre les vecteurs
II.2 - Prophylaxie médicale
CONCLUSIONS GENERALES
BIBLIOGRAPHIE

i
1
1 NT R 0 D U CT ION
==================================

-
1 -
Il Y a environ 50 ans que la fièvre de la Vallée
du Rift (FVR), virose transmise par des moustiques
a été
j
reconnue comme une affection épizootique importante, frap-
pant les populations de bétail au Kenya, en Ouganda et en
Tanzanie.
Ultérieurement, la FVR a été observée dans d'au-
tres régions d'Afrique Orientale et Méridionale, du Soudan
à l'Afrique d~ Sud en passant par le Malawi, la Zambie, le
Zimbabwé et le Mozambique.
La maladie s'est là aussi comportée à la manière
d'une épizootie.
Dans d'autres pays de l'Afrique sub saharienne,
où la FVR ne s'est pas manifestée chez les animaux domesti-
ques sous forme d'une affection clinique apparente, des
enquêtes sérologiques ont montré qu'il existe probablement
des cycles de maintenance de la FVR.
En effet, en divers points de l'Afrique, des anti-
corps anti-virus FVR ont été trouvés chez des êtres humains
et des animaux (24), (41).
L'impressionnante apparition de la maladie en
Egypte en 1977, montre que la FVR a débordé de son berceau
d'origine et est en train de conquérir une place parmi les
maladies virales susceptibles de devenir un problème d'im-
portance natiO!lale voire continentale.
C'est pour toutes ces raisons qu'il nous a paru
intéressant de rechercher cette zoonose d'actualité mena-
çante au Niger étart donné la place qu'y occupe l'élevage
dans l'économie nationale et l'importance hygiènique de la
maladie.

- 2 -
Notre travail
comportera trois parties
Dans la première partie, nous ferons une mise au point
des connaissances actuelles de la FVR.
- Dans la deuxième, après avoir fait une étude du milieu
diélevage, nous exposerons notre enquête et ses résultats.
- La troisièm'~ partie traitera des méthodes actuelles de
lutte contre la FVR en Afrique et une éventuelle appli-
cation au Niger.

,..
PREMIERE
PAR T 1 E
GENERAL1TES SUR LA FIEVRE DE LA
=============-===================,====
VALLEE DU RIFT (FVR)
=======================

- 4 -
La première partie de notre travail aura pour ob-
jectif de faire le point de nos connaissances sur la FVR
en Afrique.
Ainsi, dans un premier chapitre, après avoir dé-
fini la maladie, nous parlerrns de l'historique, des espèces
affectées, de l'importance et de la répartition géographique.
Dans un second chapitre, nous présenterons l'agent
infectieux.
Le troisième chapitre traitera de l'Epidémiologie
puis nous terminerons dans un quatrième chapitre par le
diagnostic de la FVR.
CHAPITRE 1 -
DËFINITION - HISTORIQUE - ESPÈCES AFFECTËES -
-------------------------------------------
IMPORTANCE ET RËPARTITION GËOGRAPHIQUE
--------------------------------------
--------------------------------------
1.1 - DEFINITION
La Fièvre de la vallée du Rift (FVR) ou hépatite
enzootique est une maladie infectieuse, virulente, inocula-
ble, non contagieuse chez les animaux, commune à l'homme
et à certains animaux, en particulier le mouton et la chèvre.
C'est une arbivorose.
Cette affection se caractérise par sa nature épi-
zootique, sa courte période d'incubation, un épisode fébrile
bien marqué mais bref et une nécrose du foie allant diune
lésion focale typique, à une lésion de caractère diffus.
Le taux de mortalité est élevé spécialement chez les jeunes,
tandis que les adultes guérissent souvent et que les femel-
les gestantes avortent généralement.

- 5 -
Chez l'homme, en général, la maladie n'est pas
mortelle. Après une courte incubation (3 jours), apparaît
la fièvre accompagnée d'adynamie sévère, d'arthromyalgies,
de vomissements et de diarrhée, de douleurs lombaires et
abdominales. La maladie peut se compliquer d'encéphalite
et de troubles oculaires.
1.2 - HISTORIQUE
La maladie fut décrite pour la première fois en
1912 dans la vallée du Rift au Kenya par STORDY cité par
MARNIQUET (34).
Deux vétérinaires, DAUBNEY, HUDSON et un Médecin
GARNHAM (12) décrivent en 1931 l'affection sévissant sur
les moutons d'une ferme située au bord du Lac Naïvasha au
Kenya.
DAUBNEY et CoU. (12) ont identifié le virus res-
ponsable. La même année, en sept semaines, 1 200 brebis et
3 500 agneaux meurent. La mortalité ne dépassant pas 20 p.
100 chez les adultes, elle atteind 95 p. 100 chez les nou-
veau-nés.
Liannée suivante, BROOM et FINDLAY (7) montrent
que la déviation du complément est une méthode sûre de diag-
nostic.
Ce niest qu'en 1948
qu'il a été établi que le
vecteur de l'infection est un moustique. La maladie fait sa
première apparition en Afrique du Sud en 1950-51, provoquant
la mort de plus de 100'000 ovins et bovins. Cette épidémie
prêta à confusion. Plusieurs vétérinaires et assistants
ayant pratiqué des autopsies, présentèrent des symptômes
faisant penser soit à la fièvre Q, soit à la FVR.

- 6 -
, .;. ;.~:
Les tests d'inoculation à la souris, la neutrali-
sation par un sérum hyperimmun, permirent de dire qu'il
s'agissait de FVR. Au cours de ces recherches, tous les
manipulateurs, sauf un~ contractèrent l'infection.
De 1952 à 1954, l'épidémie sévit au Kenya dans
toutes les zones comprises entre 4 500 et 6 000 pieds au-
dessous du niveau de la mer (1 mètre = 0,3048 pied).
Le virus de la FVR a été isolé et identifié comme
étant responsable d'une épizootie apparue en 1973 dans le
district de Kosti à 200 km environ du Sud de Khartoum, dans
la province du Nil (19)~ (20).
En 1976, une flambée de la maladie s'est à nouveau
produite plus au Nord encore de ce district.
C'est en 1977 que la FVR a été identifiée pour
la première fois en Egypte chez les animaux domestiques.
Dans ce pays, la maladie a connu une large et rapide exten-
sion.
Déj à, '.une'première constatation s'impose.
L'historique de la maladie fait apparaître des poussées cy-
cliques de FVR entrecoupées de périodes où la maladie ne
se manifeste pas. Il sera donc intéressant d'interpréter
ce fait au chapitre de l'épidémiologie.
1.3 -
LES ESPECES AFFECTEES
- Dans les conditions naturelles
la maladie affecte les
ruminants domestiques : les ovins, caprins et bovins.
Mais les petits ruminants sont plus sensibles. C'est ce
qui explique le choix de ces espèces pour notre enquête
que nous exposerons dans la deuxième partie.

- 7 -
La sérologie montre que la maladie existe chez
les chameaux et les ânes (3).
Les ruminants sauvages comme les buffles et les
antilopes peuvent être atteints de même que les rongeurs
sauvages (le rat
roussard ou Arvicanthis abyssinicus).
En effet, des anticorps anti FVR furent décelés
chez : Mastimys natalensis
et Lernniscomys griselda.
- Dans les conditions expérimentales.
Un grand nombre dianimaux sont expérimentalement sensi-
bles à l'infection par le virus de la FVR.
• L'how~e
· Les singes (Cercopithecus aethiops)
• Les carnivores (chat
furet)
3
• Les ruminants (mouton
chèvre, vache, buffle)
3
· les rongeurs (Arvicanthus abyssinicus nairobieae)
· Les animaux de laboratoire (rat
souris).
3
1.4 - IMPORTANCE
L'importance de la FVR est perceptible sur les
plans économique et hygiénique.
- Economique : Bien que les pertes causées par
la FVR chez les animaux n'aient pas été estimées en termes
monétaires, il est évident que lorsqu'elle apparait sous
forme épizootique
la maladie peut avoir pour le revenu
3
national des conséquences considérables. C'est ce qui res-
sort de l'observation du taux de morbidité, du taux de mor-
talité élevé chez les jeunes animaux, et de la diminution

... 8 "
importante voire de la perte totale de la production de lait
chez les femelles en lactation.
L'effet de la maladie humétine sur la productivité
en général est également important .
.~. Hygiénique:
' . C
Le virus de la FVR est très contagieux pour l'hom-
me. En effet~ tout chercheur s'occupant de FVR est certain
de la contracter un jour ou l'autre quelles que soient les
précautions prises : gants~ nmsques, etc J ,
s 9 il n'est pas
vacciné.
A côté de cette Illordibité élevée, jusquien 1975
on nia cité qU'un seul cas mortel dû à une thrornbophlébite
compliquée d'infarctus pulmonaire.
Cependant, lors d'une flambée épizootique en
Afrique du Sud en 1975~ on a eu à déplorer cinq mortalités
humaines sur une centaine de cas (44).
En Egypte, dans les environs de Belbes (delta du
Nil), il Y a eu 600 décès chez l'ho~ne (44).
L'affirmation de la bénignité de la FVR humaine
doit donc maintenant ~tre rejetée (44).
1.5 - REPARTITION GEOGRAPHIQUE
Si la maladie sévit au Kenya (12)~ en Afrique du
Sud (1, 41, 55)~ au Zimbabwé (48); au Nigéria (2) (22) (23)jl
en Ouganda (26) (55)s au Mozambique (52)jl au Soudan (19)
(20) (21) et récemment en Egypte (30) (39)3 des enquêtes
sérologiques effectuées che~ l'homme et les animaux montrent
que la FVR est très largement répandue à l'image des arbo~
viroses africaines.

- 9 -
On trouve des anticorps daas1les sérums des habi-
tants du Mali (11) (24), du Tchad, du Cameroun~ de la Répu-
blique Centrafricaine (37), du .Congo (42)J du Gabon (24)~
de l'Angola (29).
L'isolement du virus au Kenya, au Zimbahwé, au
Botswana, dans le Sud Ouest africain confirment l'extension
de la maladie sur tout le Continent Africain au Sud du Sahara.
Cette généralisation de la maladie~ si· elle compor-
te des limites~ montre le danger de son introduction dans
les Continents Américain et .Européen en raison d'importation
d'animaux notamment de singes.

- 10 -
.. '
CHAPITRE II -
L'AGENT INFECTIEUX: LE VIRUS
-----------------------------
-----------------------------
Le virus de la FVR appartient à la famille des
Bunyaviridés, au sein de laquelle il a été classé dans le
genre Phlébovirus.
II.1 - PROPRIETES PHYSICO-CHIMIQUES ~:li
IL 1. 1 - Morphl)~ogie - Structure.;. Biochimie
Le fait qu'un virus soit rangé dans la famille des
Bunyaviridés se fonde sur les propriétés structurales des
particules virales.
Sphériques~ (80 à 110 nm de diamètre)~ elles sont
enveloppées d'une memb
ue pourvue de projections
,,'"
&,
polypeptidiques (long,1[e
e
,~O nrn) et contiennent trois
' ' ' -
nucléocapsides hélico ~~e~~f~ ~ s chacunes d'une seule
espèce dlARN à brin UniqUe,
. i:;~ polypeptide nucléo~capsi-
dique majeur (Protéine N).
~..
__
c..' 0
';;0\\/' ;
Les trois espèces dVARN viral peuvent se décrire
diaprès leur Jimension relative à savoir grande (L), moyen-
ne (M) et petite (S). L'ARN (3) code la protéine N~ l'ARN
(M) les deux glycoprotéines de l'enveloppe (G1 et G2) et
l'ARN (L) probablement une ARN -polyrrérase orientée vers
l'acide nucléique.
Le virion de la FVR ~enveloppén est sphérique. Il
a un diamètre de 95 à 105 nm~ et est assez polymorphe. Sa
masse moléculaire relative est d'environ 350 x 10 6 • Celles
des trois espèces d'ARN est estimée comme suit
2~7. 106 pour L, 1~7. 106 pour M et 1. 10 6 pour S.
:,:
"
:. -:.
Les protéines N~ G1 et G2 représentent les grands
"
...
polypeptides de structure du virion de la FVR.

- 11 -
La protéine L des Ph1ébovirus se trouve dans la
nucléocapside en plus de la protéine N.
Les masses moléculaires relatives de ces polypepti-
des de structure sont: 170 x 10 3 pour la protéine L, 63.10 3
pour la glycoprotéine G1~ 56.10 3 pour la glycoprotéine G2 et
25.10 3 pour la protéine N. G1 et G2 forment les projections
qui font saillie à la surface.
Les cellules infectées par un Phlébov1rus synthéti-
sent au moins une protéine non structurale.
On pense que celle-ci est codée par le segment d'ARN (8).
Le virus de la FVR est capable d'agglutiner les érythrocytes
d'oiseaux.
II.1.2 - Résistance
- Résistance à la température.
Le virus de la FVR survit go jours à la température
ambiante, 1000 jours à - 40°C.
Lyophilisé ou congelé~ il survit des années.
A 50°C il est inactivé en 40 minutes.
- 8tablité dans l'air.
Le virus est très stable en aérosol à + 24°C avec
un degré hygrométrique de 50 à 85.
- Résistance aux agents chimiques.
,i
Le virus en solution formolée à 1 p. 1000 est inac-
tivé en 40 minutes. Cette souche inactivée fut
à l'origine
des premières vaccinations contre la FVR.
Le virus résiste six mois à + 4°C en solution d'acide phéni-
que à 0,5 p. 100.

- 12 -
II.2 - CULTURE DU VIRUS
Elle est possible sur animal vivant~ sur oeuf em-
bryonné et sur cultures de cellules.
II.2.1 - In vivo
Le virus de la FVR cultive facilement in vivo.
Les rongeurs et les singes sont facilement infectés par in-
jection sous-cutanée~ intrapéritonéale, ou intra-cérébrale~
de même que par instillation nasale~ par injection dans le
sac conjonctival ou légère scarificationde la peau.
La culture in vivo est si facile et le virus si
virulent que 0»1 ml de sang d'animal atteint de FVR dilué
à 10- 10 permet la transmission de la maladie à la souris.
II.2.2 - In ovo
Le virus de la FVR prolifère très bien sur le blas-
toderme d'embryon de poulet dlun jour quoique les titres de
virus relevés soient sensiblement plus bas que sur la souris.
La multiplication du virus décroit avec l'âge de
l'embryon et les passages successifs du virus d'embryon à
embryon ne montrent aucun changement quant au pouvoir anti-
gène et au pouvoir pathogène pour la souris (35).
II.2.3 - Sur culturœcellulairœ
Le virus de la FVR cultiVe sur de nombreux systèmes
cellulaires. La plupart des cultures cellulaires sont sensi-
bles à l'exception des lignées lymphoblastoides.
MACKENZIE (31) et SADDINGTON (46) réussirent à
cultiver le virus sur fibroblastes
d'embryon de poulet et
ce, pendant 12 passages consécutifs.

- 13 -
Cette culture a été réalisée également avec succès
par EASTERDAY (14).
Le virus se cultive aisément sur les cellules réna~
les d'agneau~ les cellules rénales de hamster et celles de
singe~ de même que les cellules de foie humain~ les cellules
pulmonaires du cobaye~ les cellules Hela (35)~ les cellules
diploldes humaines (WI - 38) (18).
Par contre~ le virus de la FVR ne cultive pas sur
les cellules rénales de porc~ de veau~ de fur€t~ ni sur les
cellules testiculaires du cheval.
La culture du virus de la FVR sur cellule a perm~
de constater une altération de ce virus pantrope (principale-
ment hépatotrope) par passages successifs sur culture de
testicules d'agneau.
Ces passages successifs produisent une altération
de la virulence constatée sur la souris adulte.
Le phénomène fut expliqué par une adoptation neuro-
trope du virus. Le virus issu de ces passages
injecté par
voie intra-péritonéale à la souris montre à la fois des ten-
dances pantropes et neurotropes (10).
La culture cellulaire permet donc de modifier le
tropisme du virus lui-même. Elle permet en outre de constater
l'effet cytopathogène du virus de la FVR (ECP).
Cet E.C.P. se manifeste de trois façons.
- Les inclusions nucléaires.
COACKLEY (9) montre que des souches de virus de la
FVR isolées récemment produisent des E.C.P. sur les cultures
~ellulaires des testicules d'agneau.

- 14 -
Après coloration des cellules infectées, à l'aide
d'éosine et d'hématoxyline, il montre la présence dans dif-
férentes cellules, de deux types d'inclusions intranucléaires.
* des filaments éosinophiliques
* des corps arrondis éosinophiliques appelés corps
de DAUBNEY, HUDSON et GARNHAM.
- La lyse cellulaire
MATUMOTO, OGIWARA et SHINKAWA
ont montré en 1955
que des souris auxquelles on a injecté dans la cavité péri-
tonéale des cellules tumorales d'ascite d'Ehrlich, sont très'
sensibles à une inoculation intra-péritonéale d/une souche
neurotrope de virus de la FVR, alors que les souris normales
ont une faible sensibilité vis-à-vis du même virus.
Le virus se multiplie d'abord dans les cellules
tumorales d'ascite qu'il détruit : ceci se traduit par:
~ la diminution du nombre de cellules évaluée à
l'hématimètre
* la diminution du volume de l'ascite
* l'augmentation du titre du virus dans le liquide
d'ascite.
La lyse cellulaire provoquée par le virus de la
~'FVR
a
permis~
de mettre au point une méthode
de titration d'l virus sur les cellules de reins de hamster,
dans un milieu sans sérum. Dans ces conditions, le virus
provoque une destruction rapide de la couche cellulaire
et
il est possible de faire un titrage de virus et de calculer
la dose provoquant un E.C.P.
50 p. 100.
Cette méthode donne des résultats comparables à
ceux que lion obtient avec la méthode des plages. Par contre,
elle est plus sensible que le titrage in vivo.

- 15 -
- Les plages
TAKEMORI~ NAKANO et HEMNI
(51) ont montré que des
plages apparaissent sur une culture en couche simple de cel-
lules de sarcome de rat~ infectée avec la souche pantrope et
la souche neurotrope du virus de la FVR. Les plages apparais-
sant 3 à 5 Jours après l'inoculation, ont un diamètre de
1,5 mm au maximum et ceci pour les deux souches de virus.
Le nombre de plages produites par la souche donnée est constant
et inversement proportionnel a la dilution du virus.
L'immun sérum spécifique empêche leur formation.
II.3 - PROPRIETES BIOLOGIQUES
II.3.1 - Pouvoir pathogène
Il est variable selon les souches.
- Le pouvoir pathogène des souches sauvages du virus de la
FVR est considérable du fait de leur hépatotropisme prononcé.
Les ovins~ bovins~ caprins, buffles~ antilopes et
l'homme font facilement l'infection.
Le singe~ furets~ chats~ rongeurs sauvages sont
aussi susceptibles,de même qu'au laboratoire: les rats~
souris~ hamsters sont des animaux de choix pour l'étude expé-
rimentale de la maladie.
Ce pouvoir pathogène a été très bien étudié en par-
ticulier chez les ovins~ espèce
très sensible
à la maladie
(15).
Les agneaux sont infectés par 200 DL 50 souris par
voie intra-péritonéale et tués
à intervalles réguliers.
Le titrage du virus sur des agneaux morts d'infec-
tion expérimentale est très instructif puisqu'on s'aperçoit
qu'il y a une corrélation parfaite entre les lésions provo-
quées par l'inoculation expérimentale de la maladie et la
répartition du virus dans l'organisme.

- 16 -
Les observations macroscopiques et histologiques
ont permis de conclure que le foie est le premier site de
multiplication du virus.
En effet, la quantité de virus dans le foie est supérieure
dans tous les cas à la quantité de virus dans les autres
tissus.
Le titre élevé de virus dans la rate niest dû quià
la filtration sanguine opérée par cet organe et la concentra-
tion du virus in situ.
- Pouvoir pathogène des souches neurotropes.
Après passages en série sur la souris par voie
intracérébrale, les souches sauvages pantropes et particu-
lièrement hépatotropes du virus de la FVR, deviennent neuro-
tropes et possèdent à ce titre un pouvoir pathogène propre
(32).
La souche est fixée dans son neurotropisme après trente pas-
sages.
La multiplication du virus de souche neurotrope dans la rate
et le foie de souris a été bien étudiée par MATUMOTO, NISHI
et SABURI (36) qui montrèrent que :
La souche neurotrope injectée par voie intra-
péritonéale à la souris se multiplie dans la rate et le foie.
~ Le virus est décelé dans la rate au bout de 41
jours.
- Le virus est décelé dans le sang circulant pen-
dant quelque~ jCurs et même après apparition dianticorps neu-
t~Rlisants dans le sang.
- Après un passage en série sur la rate de souris,
une faible dose de virus, injectée par voie intra-péritonéal$
provoque chez la souris des symptômes nerveux qui sont mor-
tels.

- 11 -
II.3.2 - Pouvoir antigène et immunogène
Bien que M1MS (40) ait parlé de virus incomplet~
possédant une activité antigénique propre~ on s'accorde à
penser qu'il n'y a qu'un seul type antigènique pour la FVR.
Cet
antigène, après inoculation~donne naissance
à différents anticorps qui confèrent après guérison une immu-
nité solide et durable. Celle-ci chez l'homme par exemple~
serait supérieure à vingt anb.
- Les articorps· fixant le complément
IWASA (21) a bien montré la présence d'anticorps
intracellulaires fixant le complément détectables au bout de
cinq heures dans les cellules infectées d'une culture de foie
humain.
Déjà, en 1950, BROOM et FINDLAY avaient étudié la
fixation du complément et avaient comparé les résultats des
souches neurotropes et des souches pantropes. Celles-ci pré-
sentaient entre elles une identité immunologique.
- Les anticorps inhibant l ' hémogglutination
Ils sont présents dans le sérum d'animaux infectés
dès le dix-huitième jour.
Ces anticorps, de même que ceux fixant le complément
persistent encore après dix huit mois d'observation mais le
titre décroit.
- L€s
Anticor9s neutralisants.
Ces anticorps persistent longtemps dans le sérum
des sujets infectés (8).
- Les Anticorps précipitants.

- 18 -
CHAPITRE III -
EPIDÉMIOLOGIE
LVétude épidémiologique est abordée sous deux
~spacts
analytique et synthétique.
111.1 - EPIDEMIOLOGIE ANALYTIQUE
Elle procède à IVétude des sources de virus FVR,
de la réceptivité et sensibilité des animaux et des diffé-
rents modes de transmission.
111.1.1 - Sources de virus
Les principales sources de contagion
sont les
malades, les cadavres, les produits dVorigine animale.
Les connaissances sont très limitées concernant
les porteurs à IVheure actuelle.
- Chez l'animal malade :
CVest essentiellement le sang qui est virulent au
cours de la phase de virémie.
- Chez le cadavre :
Le foie, la rate, le cerveau sont des tissus sus-
ceptibles de fournir à coup sûr des matières virulentes.
Moins régulièrement, les poumons, les reins et les testicules
possèdent les mêmes propriétés.
- Les produits dVorigine animale
La viande fraiche réfrigérée et congelée, le lait
et ses dérivés,
la laine, les os, les fourrures
les peaux
7
et le fumier constituent des sources de propagation éventuel-
le du virus.

- 19 -
111.1.2 - Réceptivité - sensibilité
Elles sont sous la dominante des facteurs intrinsè-
ques et extrinsèques •
. 111.1.2.1 - Les facteurs intrinsèques
- L'espèce.
· Les ovins sont extrêmement sensibles.
• Les caprins: la chèvre~ bien que moins sensible
que le mouton~ offre le même tableau clinique
que celui-ci.
• Les bovins : sont sensibles dans toutes les zones
où sévit la FVR mais la mortalité dans ces espèces
est très rare.
· Les ruminants sauvages : les buffles africains~
les antilopes et autres ruminants sauvages sont
sensibles encore que le syndrome infectieux
paraisse peu sévère.
Le cheval~ le porc, le cobaye et les oiseaux ne
sont pas réceptifs.
L'homme : il y a peu de virus aussi contagieux
pour l'homme de laboratoire.
Rappelons que DAUBNEY et HUDSON, avec deux de leurs
assistants contractèrent la maladie au cours de leur expé~.
riences.
E.n Afrique du Sud, durant l'épizootie de 1930,
tous les bergers contractèrent la maladie et en 1951~ 20 000
personnes fu~ent touchées lors de la recrudescence de la
maladie dans ce pays.

- 20 -
- La race
Il a été montré que les races importées étaient
plus sensibles que les races locale~.
Les jeunes sont plus sensibles que les adultes.
Ainsi chez les ovins~ toutes les flambées de FVR
montrèrent un taux de mortalité chez les nouveau-nés de
95 po 100 en 24 à 36 heures et de 20 - 25 p. 100 chez les
adultes.
III.1.2.2 ~ Les facteurs extrinsèques
La saison des pluies constitue l'essentiel de ces
facteurs. Elle intervient par IVhumidité qui est un facteur
de stress des organismes et secondairement en f~vorisant
la pullulation des insectes vecteurs.
III.1.3 -
Mode de transmission
- La contagion directe :1:
\\~,-:>",
Cv est le mod.e d~.~,.~
e plus habituel. Il
est assuré par des arthrop;~~s€~~ eurs.
Historiquement, des moutons isolés sous mousti-
quaires en plein foyer épizootique de FVR ne contractèrent
jamais la maladie.
Quant au virus, il rut isolé en 1948 de plusieurs
moustiques de l'Ouganda (50) et en particulier d'Aedès ca-
ballus et de Culex theileri.

-
21 -
Il est d'autre part prouvé que des infections hu-
maines ont suivi la piqûre de moustiques dans les foyers
endémiques d'Ouganda comme la forêt de Zika ou la péninsule
d'Entebbe.
La liste des arthropodes vecteurs de la maladie
compte tenu des connaissances actuelles est la suivante :
- Culex theileri
M. microannulat~
C. pipiens
M. africanus
C. fatigans
- Aedès cabullus
C.
Antennatus
A. durbanensis
A. tarsalis
Eretmapodites chyrogaster
A. deboeri
E. inoratus
A. circumlutoelus
E. ferax
A. africanus
E. leucopus productus
A. triseratus
A. aegypti
- Anophèles custani
A.
squamosus
A.
mauritanus
- Mansonia fUBcopennata
M.
versicolore
On a longtemps pensé que les tiques constituaient
aussi des vecteurs de transmission de la maladie. Il semble
qu'il n'en soit rien: la nymphe de Rhipicephalus appendicu-
latus, capable de conserver le virus, perd ce pouvoir lors
de la métamorphose.

- 22 -
- (.ontagion directe
Chez l'animal: la transmission directe d'animal
à animal ou la transmission par le lait n'a jamais été ob-
servée (17).
On peut évoquer la transmission de la maladie par
voie utérine depuis qu'on a isolé le virus du placenta de
brebis (34).
Chez l'hornrrle : rares sont les chercheurs qui ont
échappé à une contamination de laboratoire ou à une contami-
nation par contact avec des animaux atteints.
On n'a jamais signalé de cas de contamination di-
recte inter-humaine (28).
La contamination directe à l'aide d'aérosols est
facile aussi bien chez l'homme que chez les animaux.
Cette stabilité du virus en aérosol et la contami-
nation directe fait que l'on pourrait facilement utiliser
le virus de la FVR comme arme biologique.
111.1.3.2 -
Voies de pénétration
- Dans les conditions expérimentales.
De très nombreuses voies de pénétration sont pos-
sibles chez les espèces sensibles.
Les rongeurs et les singes sont facilement infectés
par voie sous-cutanée, intra~péritonéale, intra--cérébrale.
L'instillation nasale, ou du sac ~onjonctival,
une légère scarification de peau suffisent. 0,1 cm 3 de sang
infecté, dilué à 10-10 et injecté par voie intra-péritonéale,
à la souris suffit pour déclencher la maladie.

- 23 -
LVagneau est infecté par les voies sous-cutanée
et intrapéritonéale~ par les cavités nasales~ la conjonctive,
la muqueuse buccale.
LVagneau nVest pas infecté per os~ ni par contact
direct avec les animaux atteints (16).
- Dans les conditions naturelles.
Le mouton sVinfectp par voie intra-dermique~ cVest-
à-dire par voie cutanée ou muqueuse en faisant intervenir
les arthropodes piqueurs qui sont les vecteurs indispensables
à la propagation de la maladie.
111.2 - EPIDEMIOLOGIE SYNTHETIQUE
Elle permet de préciser IVapparition, la forme et
IVévolution de la maladie.
111.2.1 - Evolution dans le temps et IVespace
Le mode de contagion essentiellement indirect~ fait
intervenir les arthropodes piqueurs, et l'épidémiologie de
la maladie est conditionnée par la présence de ces insectes.
Si lVon tient compte de leur écologie~ la maladie
sera donc rencontrée le plus fréquemment pendant la saison
des pluies et dans les régions de ~asses altitudes. Ceci
est vrai~ car dans la plupart des pays~ la maladie est appa-
rue pendant la saison des pluies et les épizooties importantes
sont apparues avec les pluies saisonnières excessivement
denses~ surtout lorsqu velles succèdent à des périodes de
sécheresse prolongées : les pluies constituant un facteur
propice à la pullulation des moustiques vecteurs.

- 24 -
Les épizooties de FVR sont souvent séparées par
des périodes de 5 ~ 10 ans dur~nt lesquelles seule une acti-
vité virale faible voire nulle a pu être décelée.
On s'est aperçu que le cycle de maintenance du
virus se rétrécit géographiquement après les épizooties pour
se substituer à l'intérieur du cadre épizootique en foyer
d'enzootie.
Des poussées cycliques de FVR ont été enregistrées
au Kenya en 1911, 1926~ 1931~ 1936-37, 1951-52, 1962 et en
Afrique du Sud en 1950-51~ 1953
1956.
j
Ces constatations plaident en faveur d'une persis-
tance de virus entretenu par les réservoirs à virus et dans
les foyers silencieux.
111.2.2 - Persistance
- Les réservoirs à virus.
Jusqu'à présent~ on n'a pu démontrer la participa-
tion d'hôtes vertébrés au cycle enzootique~ bien qu'on s'y
soit efforcé tant par l'isolement du virus que par des études
sérologiques.
Des cas d'infection ont été occasionnellement ob-
servés chez l'homme et les ruminants dans les régions d'en-
zootie mais à un degré jugé faible pour indiquer qu'il
s'agissait d'autre chose que d'une atteinte accidentelle au
cours d'un cycle de maintenance.
On a étudié dans ces régions d'enzootie, les ron-
geurs, les oiseaux, les primates sans pouvoir trouver de
preuve de contact avec le virus de la FVR.

- 25 -
Néanmoins~ les ruminants et rongeurs sauvages peuvent être
considérés comme des réservoirs.
Il est possible que le virus s'entretienne par transmission
transovarienne chez un arthropode vecteur durant les pério-
des inter-épizootiques.
- Les foyers silencieux.
Ces foyers silencieux furent révélés dans la zone
du Knysna (Afrique du Sud) quand les anticorps neutralisants
furent trouvés dans les sérums du bétail d'un bon nombre de
troupeaux.
La maladie sévissant sous forme subaiguë~ les seuls
signes cliniques dans ce pays~ furent constitués par quelques
avortements spor~diques chez les vaches.
Il apparait donc que des développements explosifs
de la FVR par poussées cycliques dépendent beaucoup des con-
ditions climatiques car liapparition de la saison des pluies
dans les régions de basses altitudes est promotrice du déve-
loppement des moustiques~ mais dépendent aussi des .réservoirs
à virus.
En effet~ après les épizooties~ les zones touchées
sont réduites en foyers silencieux où la maladie ne provoque
que quelques accidents sporadiques.
La période inter-épizootique permet la reconstitu-
tion diune population sensible invitant à une nouvelle épi-
zootie avec liaide àes réservoirs à virus qui constituent
un volant de multiplication et de dissémination virale.

- 26 -
Rongeurs
Moustiques
Ruminants
(Arthropo~es)
sauvages
Arthropodes
vecteurs
ovins
caprins
bovins etc .•.
Cycle possible d Vlnfection
Les investigations épidémiologiques sont nécessai-
res pour comprendre l'état de la maladie et de son évolution.
Une lutte conséquente contre la FVR doit intégrer les éléments
épidémiologiques.
Cependant~ l'étude épidémiologique de la FVR est
subordonnée à la mise en évidence de la maladie: c'est-à-
dire le diagnostic.

- 27 -
CHAPITRE IV -
DIAGNOSTIC
----------
----------
Il peut être envisagé sur le terrain et au labora-
toire ciest-à-dire sur le plan expérimental.
IV.l - DIAGNOSTIC SUR LE TERRAIN
Le diagnostic sur le terrain est fondé sur des
éléments épidémiologiques~ cliniques et nécropsiques.
IV.l.l - Diagnostic épidémiologique
Lapullulat10n de moustiques dans la région peut
être un élément de présomption de la FVR.
IV.l.2 - Diagnostic clinique
Le diagnostic clinique de la FVR est très difficile~
même en pays classiquement infecté.
Cette difficulté tient au fait que la maladie ne
brosse qu'un tableau clinique ne comp0rtant que des signes
généraux~ même s'ils sont accentués chez les jeunes.
Le diagnostic clinique sera influencé par les cons-
tatations suivantes
- La courte période d'incubation.
- La mortalité à 95 p. 100 chez les jeunes 24 à
36 heures après l'apparition des premiers symptômes.
- Les avortements chez les femelles gestantes.
- Un élément non négligeable du diagnostic clini-
que sera l'apparition de l'affection chez les personnes
ayant été en contact avec les animaux infectés.

- 28 -
Cependant~ il faut différencier la FVR avec d'autres
maladies qui peuvent prêter à confusion.
* Diagnostic différentiel
Chez les animaux avec
- La Blue-tongue : c'est une maladie virale qui
met en jeu un cortège de signes généraux avoisinants mais
comporte des lésions pathognomoniques de la cavité buccale
(cyanose de la langue) que l'on ne retrouve jamais dans la
fièvre de la vallée du Rifto
- La Maladie de Nairobi : maladie virale du mouton,
comporte un signe constant et accentué : la diarrhée intense
et sanguinolente des sujets atteints.
En outre~ la phase d'hyperthermie dure deux à neuf jours.
La maladie de Nairobi est signée à l'autopsie par des lésions
stomacales et caecales~ le cadavre montre de la splénomégalie
et une glomérulomégalie constanteo
- La Heart water ou Cowdriose : maladie du mouton,
due à une rickettsie~ provoque une péricardite exsudat ive
et de la splénomégalie qui sont toutes deux constantes.
- La Maladie de Wesselsbron due à un virus~ est
aussi transmise par des arthropodes piqueurs. Elle provoque
de l'avortement chez les femelles gestantes et coexiste sou-
vent avec la FVRo
Les symptômes sont frustres, mais on note que les
non gestantes ne montrent aucun signe et la mortalité est
beaucoup moins fréquente
chez les jeunes.
Les animaux mourant de cette maladie, présentent
une splénomégalie.

- 29 -
Cependant, le diagnostic clinique différentiel est
excessivement difficile et seul le diagnostic expérimental
permet de trancher.
- La maladie de Middelburg présente les mêmes si-
gnes que la FVR et seul le diagnostic expérimental permet
de trancher à l'image de la maladie de Wesselsbron.
Chez l'espèce humaine
Le diagnostic différentiel est peu facile.
On pourra confondre la FVR avec :
- La dengue qui provoque une hyperthermie compara-
ble.
La fièvre jaune : qui donne le cortège habituel
des signes généraux des infections à arbovirus.
Puis à la ph~se organique, on note une hépato
néphrite sérieuse.
Il faut aussi éliminer la grippe, le paludisme.
IV.l.3 - Diagnostic nécropsique
L'examen.macroscopique montrera les lésions hépati-
ques de nécrose.
IV.2 - DIAGNOSTIC EXPERIMENTAL
Il apporte une certitude au clinicien et constitue
le seul moyen rigoureux de dicernement.
IV.2.1 - Diagnostic histologique
On recherchera surtout les corps de DAUBNEY, HUDSON
et GARHAM par examen microscopique.

- 30 -
Cependant outre les éléments tirés de l'examen
histologique, le diagnostic de la fièvre de la vallée du Rift
peut être confirmé par de nombreuses autres méthodes de labo-
ratoire.
IV.2.2 - Mise sn évidence du virus et de son
antigène
Il sera procédé à un isolement du virus par inocu-
lation de sang ou de suspension d'organes d'animaux atteints,
à la souris (souriceau de préférence) par voie intra-périto-
néale ou intra-cérébrale.
Les souriceaux inoculés, succombent habituellement
dans les trois jours qui suivent l'inoculation.
L'identification des virus isolés est réalisée par
l'épreuve de séroneutralisation, ainsi que par la fixation
du complément et l'inhibition de l'hémagglutination (IHA) en
culture de tissu avec un anti-sérum standard du virus de la
FVR.
La valeur de ces tests est indéniable. Ils permet-
tent un diagnostic expérimental sûr, rapide, économique.
- L'isolement du virus pourra être effectué en cultu-
res cellulaires, le virus de la FVR cultivant très bien sur
de nombreux systèmes cellulaires.
La culture étant obtenue, on mettra en oeuvre les mêmes tests
de neutralisation, de fixation du complément et d'IHA.
- L'inoculation peut également se faire sur embryon
de poulet.

- 31 -
Il est parfois plus rapide de mettre en évidence
l'antigène FVR dans les échantillons primaires recueillis
sur le terrain plutôt que d'isoler le virus. La présence de
cet antigène a été démontrée directement dans du matériel
prélevé sur le terrain
soit par diffusion en gélose
soit
j
j
par immunofluorescence (43).
Les techniques ELISA (Enzynl.·. Linked immuno sorbent
assay) et les dosages
radio·<~mmunologiques sont utilisés
pour la détection des antigènes du virus de la FVR.
Ces méthodes ne sont pas encore entrées dans la pratique
courante.
IV.2.3 - Mise en évidence des anticorps
sérologie
Pour mettre en évidence les anticorps FVR chez
l'homme et les animaux domestiques ou sauvages~ on peut uti-
liser les épreuves sérologiques suivantes :
- La fixation du complément (F.C.)
Actuellement la FC~ relativement spécifique est sans doute
la technique la plus facilement utilisée par un grand nombre
de laboratoires.
Malheureusement, elle n'est pas particulièrement
sensible et ne para1t pas mettre en évidence des infections/
très anciennes.
- La diffusion en gélose (D.G.) est un procédé
très spécifique mais à l'instar de la FC
elle n'est pas
j
très sensible.
Ellea pourtant donné satisfaction au Zimbabwé (3).
La sensibilité de la méthode peut être améliorée en ayant
recours à l'électro-synérèse.

- 32 -
- Inhibition de l'hémagglutination (IHA)
Elle a été largement employée en Egypte en 1978 et aux Etats
Unis en utilisant l'antigène hépatique de souris "tué u •
Correctement exécutée~ l'épreuve donne des résultats francs,
mais avant de la pratiquer~ il faut éliminer du sérum les
substances inhibitrices non spécifiques à l'aide de kaolin
ou d'acétone.
C'est une épreuve sensible pour la FVR, mais elle met en
évidence les anticorps d'aut~~s virus appartenant au groupe
des germes responsables de fièvres à phlébotomes.
- L'immunofluorescence (IF)
L'épreuve d'IF est sensible, bon marché, et rapide. Comme
l'IHA, elle décèle les réactions croisées avec dVautres virus
appartenant au groupe des fièvres à phlébotomes.
L'IF ne convient pas pour mettre en évidence les
anticorps induits par la vaccination.
- Epreuve de neutralisation par réduction des pla-
ges (N.R.P).
C'est l'épreuve !a plus spécifique.
Elle permet de confirmer un diagnostic présomptif.
D'autres épreuves peuvent être utilisées.
Ce sont
- L'Epreuve de neutralisation chez la souris (E.N.S)
- La méthode ELISA.
Le diagnostic de la fièvre de la vallée du Rift
sur le terrain est difficile et bien souvent douteux.
Il est heureusement compensé par un diagnostic
expérimental qui offre toute une foule d'examens qui~ bien
que présentant certains inconvénients~ permettent de lever
ce doute.

- 33 -
Parmi les épreuves utilisables pour le diagnostic
sérologique~ celle que nous avons retenue pour notre enquête
est la méthode d'immunofluorescence à cause de sa simplicité
et sa facilité d'exécution.

- 34 ...
D E' UXIE r1 E
PAR T 1 E
ENQUETE SEROLOGIQUE
,
,
SUR LA FVR
====p=============================
AU NlGER
---------

- 35 ~
L'étude de la FVR chez les petits ruminants au
NIGER, nécessite au préalable, la présentation de certaines
caractéristiques du pays.
Ainsi, le premier chapitre de cette seconde partie
de notre travail sera consacré à l'élevage dans le milieu
physique nigérien mais en mettant l'accent sur celui des
petits ruminants.
L'enquête sérologique proprement dite fera liobjet
du deuxième chapitre.
Dans le troisième chapitre, nous discuterons des
résultats de notre enquête.
CHAPITRE 1 -
ETUDE DU MILIEU
---------------
Cette présentation porte essentiellement sur les
particularités du milieu physique et l'élevage nigériens.
1.1 - LE MILIEU PHYSIQUE
Le NIGER est situé dans l'hémisphère Nord sur le
Continent Africain, entre 11°37 et 23°33 de latitude Nord
et entre 0°06 et 16°00 de longitude Est.
Il couvre une superficie de 1 187 000 km2 (13).
Il est donc après le Mali, le plus vaste état de l'Afrique
de l'Ouest.
Il est limité à l'Est par le Tchad, au Nord par l'Algérie
et la Libye, à l'Ouest par le Mali et le Burkina (ex Haute
Volta) au Sud par le Bénin et le Nigéria.
C'est un pays entièrement continental comprenant
une population estimée à environ 6 millions d'habitants
répartis dans sept départements eux-mêmes subdivisés en
arrondissements (carte nO 1 page 36 ).

•.
~.L''''''_''_''_-~~~&'è" "titY'"Z} '
tttm'tffi"~?t-'''rtff·tti . t "rTC'l@"mWW1'
- 36 -
CARTE N° 1
CARTE ADMINISTRATIVE
Frontière de l'Etat
- - - -
Limite de départements

Chef lieu de département
o Chef lieu d'arrondissement
TCHAD
~ Capitale
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MALI
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I G E
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Echelle
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- 37 -
Le NIGER se présente comme un immense plateau domi-
né au centre par le massif de l'AIr et au Nord-Est par les
hauts plateaux du Djado (carte nO 2 page 38).
Le pays vit sous un climat intertropical caracté-
risé par deux saisons très contrastées et d'inégale impor-
tance.
- La saison sèche dure 8 à 9 mois (Octobre à Juin).
C'est une période caractérisée par une lutte âpre des hommes
et surtout des animaux pour la survie.
C'est le temps des migrations des animaux vers le Sud.
- La saison humide (hivernage) va de Juin à Septem-
bre. Quelle que soit sa qualité
(volume des pluies et leur
répartition temporo-spatiale)
elle constitue la période
des activités agrico~es et celle de la remontée vers le
Nord des éleveurs et de leurs troupeaux.
Les régions pluviométriques et thermiques détermi-
nent du Sud au Nord des régions climatiques (carte nO 3
page 39).
Le réseau hydrographique de la République du NIGER
est très réduit et comprend: le fleuve NIGER et ses affluents,
le Lac Tchad et son principal affluent, la Komadougou Yobé
(carte nO 2 page 38).
Du point de vue de la végétation, deux types de
paysages végétaux se rencontrent au NIGER (49)
- la steppe arbustive ou arborée, sur les sols
sableux et leurs plateaux cuirassés.
- La steppe sahélienne définie par une strate her-
bacée
et une strate ligneuse.

- 38 -
RELIEF
CARTE N° 2 : RELIEF ET Ü~DROGRAPHIE
~ 1000m
UlIllI1Il 500 - 1 000 m
C:=J 200 - 500 m
150 - 200 m
HYDROGRAPHIE
~
mb
Cours d'eau Pérenne
à écùuleme~t saisonnier
~
cours d'eau fossile
Gorouol
eOJ
Sfrb
Komadougou Yobé
Goroub

Echelle
o
400 b
*

=._,"~~ft'''''?'P;'-'§f)rt yzôf"it'rà'Wri ~'nf'-''''l:('-;'iliPti9'Twni'i''Ërt'"M.-n.''f
- 39 -,'
, -............-
Isohyète
CARTE N° 3 : REGIONS CLIMATIQUES
o Climat
Saharien
ITIJ Sahélo-Saharien
CIJlJ NordSahélien
[JIIDJ Sud Sahélien
- Nord Soudanien
Hilma
25 mm
"",-----,' 100 mm
2~O tmn
Ecbêlla
, '
l
,

n
,4tM

- 40 -
La strate herbacée est composée de graminées et de
légumineuses recherchées par un cheptel nigérien immense
et varié, support d~une activité économique essentielle :
l'élevage.
1.2 - L'ELEVAGE AU NIGER
Occupant plus de 20 p. 100 de la population~ l~éle­
vage est demeuré pendant lo~gtemps la deuxième activité
économique du pays après l~agriculture.
A ce titre~ une attention particulière et soutenue
doit lui être portée dans la recherche d'une véritable auto-
suffisance. Cela est d'autant plus nécessaire qu'il intéres-
se plusieurs espèces animales élevées selon des modes adap-
tés à chaque région d'élevage.
1.2.1 - Les régions d'élevage
Trois principales zones sont délimitées à partir
des isohy êtes (carte nO 4 page 42) •
Il s'agit des zones pastorale~ centrale et agricole.
1.2.1.1 - La zone pastorale ou nSahelienne
sèche"
C'est une zone défavorable à l'agriculture couvrant
une superficie de 235 000 km 2 •
Elle va de l'isohyète
150 mm à l'Ouest aux iso-
hyètes 250 mm et 350 mm au Sud-Est.
Elle est subdivisée en deux sous zones
- La sous-zone à pâturages d'hivernage allant de
l'isohyète 150 mm à l'isohyète 250 mm. Elle n'offre de pâ-
turage que pendant la seule période des pluies.

.... 41 -
- La sous-zone à pâturages permanents.
Elle va d'Est en Ouest, et est· cooprise entre l'iSohyète 2S0 mm
et l'isohyète 350 mm.
Les troupeaux y transhument constamment et les
capacités de charge sont très élevées. C'est la zone d'éle-
vage par excellence.
1.2.1.2 - La zone centrale ou intermédiaire
Elle est comprise entre les isohyètes 3S0 mm et 4S0 mm et
couvre une superficie de ISO 000 km 2 •
Le pâturage abondant pendant l'hivernage est uti-
lisable toute l'année.
1.2.1.3 - La zone agricole
Moins étendue que les zones précédentes avec seule-
ment 9 SOO km 2 , cette zone est située en dessous de l'iso-
hyète 4S0 mm.•
L'importance des cultures vivrières et industriel-
les dans cette zone, pose de sérieux problèmes à l'élevage.
La juxtaposition de ces deux activités du secteur
primaire est à l'origine de nombreux conflits entre éleveurs
et agriculteurs.
A chacune de ces zones, correspond un mode d'éle-
vage particulier, résultat d'une adaptation plus ou moins
poussée.
1.2.2 - Les modes d'élevage
L'inégale répartition du réseau hydrographique,
des pluies et de la couverture végétale fait que l'élevage
est largement de type extensif.

42
CARTE Net 4
~IS REGIONS D'ELEVAGE
()
Chef lieu d'arrondissement
0, 'Chef lieu de département
'i
~ Stations. Ranchs , Centre. de Multiplication
" " ' - ' Isohyète
~
Zone'pa8t()~ale
.Zarie intermédiaire
- agricole
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•. 43 -
Cette forme d'élevage; qui à priori semble être
une exigence écologique~ est pratiquée traditionnellement
sous trois modes prédominants: l'élevage sédentaire~ l'éle-
vage transhumant et l'élevage nomade.
Aux formes traditionnelles
s'ajoutent les techni-
j
ques modernes d'exploit~tion du bétail et qui concernent
surtout l'élevage bovin.
1.2.2.1 - L'élevage sédentaire
Cet élevage est pratiqué par les populations séden-
tarisées : agriculteurs~ commerçants~ fonctionnaires.
L'élevage se fait le plus souvent sur un mode semi
extensif.
Les animaux utilisent dans la journée le pâturage
autour du village, à la lisière des champs, sous la condui-
te des enfants ou du berger Peuhl du village qui le soir
venu, les ramène au village. A côté, il y a une autre forme
d'élevage sédentaire. Les moutons et chèvres sont attachés
au piquet, ou logés dans un parc où ils reçoivent leur ali-
mentation.
D'autres éleveurs
conduisent les animaux aux
champs. Ces animaux sont attachés à une longue corde leur
permettant un petit déplacement. C'est une forme de pâtura-
ge rationné.
L'élevage sédentaire est loin d'être négligeable.
C'est un mode qui, à cause de la promiscuité, favorise
l'éclosion et l'entretien des maladies contagieuses et des
zoonoses.

- 44 -
1.2.2.2 - L'élevage transhumant
La transhumance est un ensemble de mouvements pé-
riodiques intéressant la totalité ou une partie de la masse
pastorale et qui s'effectuent à l'intérieur des pâturages qui
leur
sont réservés.
Concernant les petits ruminants, cet élevage est
pratiqué par les Oudahs.
Pendant l'hive~nage~ les éleveurs et leurs trou-
peaux quittent le Sud à vocation agricole pour s'installer
dans la zone pastorale du Nord. Au début de la saison sèche,
le mouvement en sens inverse s'initie et s'amplifie.
Le retour est motivé par la raréfaction des points
d'eau et le dessèchement de la prairie naturelle.
Cette seconde transhumance peut les conduire jus-
qu'au centre du NIGERIA.
L'élevage transhumant présente un intérêt sur cer-
taines parasitoses en créant la rupture dans les cycles de
développement des parasites. Par contre, il dissémine les
germes et crée de nouveaux foyers de maladies microbiennes.
1.2.2.3 - . L'élevage nomade
Le nomadisme est un ensemble de mouvements désor-
donnés intéressant la totalité de la masse pastorale. Ces
déplacements sont anarchiques, non programmés, effectués
pour la recherche d'eau et de pâturage (47). On revient
rarement au point de départ.
L'élevage nomade des petits ruminants est surtout
pratiqué par les Touaregs mais aussi par les Toubous.

- 45 -
S'agissant du gros bétail, ce type d'élevage est
dans les mains des Peuhls
Bororo.
Il nêcessite des races d'animaux très adaptées aux
rudes conditions qu'il impose: caprins - ovins, camélins -
Zébu bororo.
Tout comme la transhumance, le nomadisme peut fa-
voriser les maladies contagieuses autres que celles dues
à la cohabitation prolongée.
Cependant, la rudesse du climat des régions où
il s'effectue, ne permet guère la survie des germes en mi-
lieu extérieur.
A1nsi l'élevage traditionnel, malgré ses avantages
indéniables, comporte cependant de sérieux inconvénients
préjudiciables au développement social et économique de nos
pays.
C'est pourquoi, des techniques d'élevage dites
modernes ont été introduites.
Il faut souligner la rapidité avec laquelle sont
mis en place des eentres de multiplication des bovins et
la lenteur des examens des dossiers des projets axés sur
l'exploitation des petits ruminants.
1.2.2.4 - L'élevage moderne
Il a pour but de contribuer à l'autosuffisance
alimentaire du pays.
C'est un travail de longue haleine qui consiste
en une sélection des races animales locales qui présentent
les meilleures potentialités de production.

- 46 -
L'objectif visé~ étant l'amélioration quantitative
et qualitative des 'productions animales.
Alnsi~ plusieurs unités modernes de production sont
déjà fonctionnelles à travers le territoire.
Mais comme ces unités de production ne concernent
surtout que les bovinû nous ne ferons que. les_citer brièvement.
- La station expérimentale de Toukounous.
Créée en 1954, dans l'arrondissement de Filingué département
de Niamey~ elle est situé à 200 km au Nord-Est de cette
dernière.
Elle a pour vocation la sélection et l'amélioration
du zébu Azawak qui possède des
potentialités laitière et
bouchère appréciables.
- la station de Kirkissaye~ créée en 1976.
Elle se consacre également à l'exploitation du zébu Azawak
mais elle a surtout une vocation laitière.
Elle est située à une dizaine de kilomètres de Niamey~ sur
la rive droite du fleuve.
- Le Ranch de Tiaguiriré.
Situé à une vingtaine de kilomètres~ au Sud de Niamey~ sur
la rive droite. Il pratique l'embouche bovine.
- Le Ranch Nord - Dakoro.
Situé dans le département de Maradi~ ce ranch s'occupe de
l'amélioration du zébu bororo.
- Le Centre de multiplication d'Ibecetène.
Créé en 1974 dans le cadre du nprogramme National
de Re-
constitution du Cheptel" il est situé à environ 90 km au
Nord-Est de Tahoua. On y exploite deux races bovines :
l'Azawak et le Bororo.

- 47 ~
- Le Centre caprin de Maradi.
Le centre d'Elevage Caprin de Maradi a été créé en 1962
mais il n'est opérationnel que depuis 1964.
Son objectif est de constituer un noyau de la race
rousse de Maradi et diffuser des éléments reproducteurs
parmi les races locales.
La chèvre
rousse de Maradi se distingue des races locales
par différents caractères.
- Il s'agit d'une race sédentaire (race de case) qui peut
garder sa place dans l'élevage malgré la campagne menée
contre la chèvre conpidérée comme facteur de désertifica-
tion.
- Une bonne prolificité : les portées de deux et même de
trois chevreaux ne sont pas exceptionnelles.
- La qualité de la peau est appréciée en tannerie et en
maroquinerie.
La chèvre rousse ne semble pas se distinguer en ce qui
concerne la lactation.
"Le centre caprin concentre ses efforts sur une
double vocation :
• la meilleure connaissance de la race et ses ap-
titudes zootechniques •
• l'amélioration de la race par une sélection gé-
nétique qui ne soit plus fondée sur la couleur
de la rode.
L'étude des modes d'élevage nous conduit naturel-
lement à étudier la composition du cheptel nigérien qui
est fort varié.

- 48 -
1.2.3 - Les espèces animales
1.2.3.1 - Les bovins
C'est l'espèce économiquement la plus importante.
Elle est là plus explojtée et la mieux étudiée. Ce cheptel
bovin est estimé à 2 724 294 têtes en 1983. (Tableau 1
page 51) (5 ).
Il est presque totalement constitué de zébus (Bos
indicus) à l'exception de quelques taurins de race kouri
localisés dans les régions riveraines du Lac Tchad. Parmi
les zébus on distingue trois grandes races : Azawak - Bororo
et Peuhlou Djelli.
1.2.3.2 - Les ovins
Le cheptel ovin nigérien comprend de nombreuses ra-
ces ovines que ARY (6) classe en deux groupes : les moutons
à poils et les moutons à laine. Ces derniers beaucoup moins
importants par leur nombre et leur production sont élevés en
petits troupeaux surtout par les sédentaires. Les moutons à
poils, de plus grande taille, sont aux mains des pasteurs.
1.2.3.2.1 - Les moutons à laine du
NIGER.
Ce sont :
- le mouton à laine du Bas - NIGER q.ue les Dj ermas appe lIent
KOUNDOUM.
- un petit noyau de moutons à laine arabes et toubowappelés
DANE ZAILA et HADINE.
Le mouton à laine Koundoum vit sur les bords du
Fléuve èrttre Niamey et la frontière du Mali. Ce mouton est
rencontré en grand nombre dans l'arrondissement de Ti"llabéry
et une petite partie dans l'arrondissement de Niamey.

- 49 -
Le mouton RADINE ou "mouton noir Toubou~ vit dans
l'Est du pays dans les régions frontalières du Tchad avec
l'arrondissement de N'Guigmi en zone subsaharienne.
C'est dans la même région qu'est rencontré le mou-
ton DANE ZAILA qu'élèvent les Arabes de la région de N'Gourti.
1.2.3.2.2 - Les Moutoψ PoiJs
C'est le groupe le plus important à tous les points
de vue.
Ce groupe est composé au NIGER par deux grandes
races
les moutons Peunl
et le mouton Targui.
- Les moutons peuhl
avec comme variétés le Bali-bali et
le mouton Oudah.
Le mouton peuhl vit dans la zone sahélienne. La variété
Bali-bali, élevée par les bouviers descend rarement au
Sud de l'isohyète 500 mm.
- Le mouton Targui ou ARA - ARA.
Il partage avec le zébu Targui ou Azawak la région nord
sahelienne à saharienne sablonneuse. On le rencontre aussi
dans les départements de Dosso et Niamey.
Le cheptel ovin était estimé en 1983 à 3 448 110.
1.2.3.3 - Les caprins
Prolifiques et très résistants} les caprins cons-
tituent l'espèce animale la plus importante en nombre. Ils
sont répartis en deux groupes :
- La chèvre du Sahel avec comme race la chèvre peuhl
et
la chèvre targui.
Elle occupe le Nord et l'Est du pays. C'est un anjmal de
grande taille adapté aux régions des grandes steppes, con-
formé pour les longs parcours qu'imposent les transhumances.

- 50 -
Elle accompagne les troupeaux bovins dans toutes les migra-
tions et tire largement profit du pâturage arbustif sahélien.
Les plus grands troupeaux sont aux mains des nomades.
- La chèvre rousse dite communément chèvre naine ou chèvre
rousse de Maradi. Elle est très renommée pour la qualité
de sa peau. Elle est adaptée aux zones des sédentaires et
son importance tant en nombre qu'en revenu s'affirme d'an-
né en année.
Cette race est largement répandue au Centre du pays entre
Maradi et Tessaoua. Les métis également nombreux
se re-
j
trouvent de part et d'autre de la frontière à l'Est et à
l'Ouest sans toutefois remonter très haut.
Fragile et exigeante
elle ne s'accomode ni de longs dép la-
j
cements
ni d'une climatologie sahélienne prononcée. Son
j
a1p~ de dispersion s~mble localisée entre les isohyètes
500 mm et 800 mm.
1.2.3.4 - Les camelin.s
Ils sont exclusivement représentés par des droma-
daires. MAHAMAN (33) signale l'existence de plusieurs races
de dromadaires au NIGER. MAYANA (38) les répartit en deux
grands groupes
- le "chameau" de l'AIr
- le uchameau" du Sahel.
Le cheptel nigérien comporte également des Equins
et des Asins (voir tableau .1 ~ page 51).
Ce cheptel dont nous venons d'étudier la composition
en insistant sur les petits ruminants, fait l'objet de spé-
culations économiques aussi bien au niveau individuel que
national.
Quelle est donc l'importance économique de l'élevage au
NIGER ?

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- 51 -
TABLEAU N° T
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......
,
-
- - - - - - -
. - - - - - - - .
-
1
-
ESTIMATIONS DU CHEPTEL PJ R DEPARTEMENT EN 1983
k _ _
f - - .._ - - - - - - - .
. - - _ . .
- - '
••..•
f
-
Départements
Superficie
Bovins
Ovin:
Caprins
Camelius
Equins
A.s:in:ts
_
-----_._-----
_
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_
.....
...
....-
.....,.,.....
' - - ' - ' - - -
i
-
~---_.-.,
AGkDEZ
615 200
23 590
93 600
16.1 580
50 530
1 100
13 030
._----.,.--..
--1---"--"--
,---"--
DIPPA
140 226
500 203
269 :568
808 667
Sr; r.;r;,o
.-
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20 544
LI5 196
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1
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'")1
DOSSO
31 002
346 823
2'{0 863 '
50 (J'
397 803
t..:....L
U
31 595
28 828
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1 226 41é1
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NIAMEY
89 762
}~2 30/4
588
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JI
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50 641
95 009
473"(2
---.-
..
1
--
-------,----._-_...-
-,- '--"'
......
TAH01JA
112 697
631 940
653 4~0 1 2 138 180
36 580
33 560
?22 710
_.
..
.~
'---'-
,,_...
--
- - - - - -
._----~--
ZINDER
145 490
750 511
931 )28 1
:1 983 959
84 700
67 320
78 001
,..----
..
._-_.-
-
-_.
TO'rAL GENERAL
2 724 294
3 41.}8 110 1 7 1+78 178
322 888
283 968 -t-:;2 348
1983
..
1982
3 lt'{2 000
3 315 aoo J
'7 292 000
IW7 000
279 000
485 000
-
_.
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@At. 4
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- 52 -
I.2.4 - Importance économique de l'élevage
L'élevage constitue une des plus grandes richesses
du NIGER.
Ainsi en 1968, avant la grande sécheresse des an-
nées 1970-73, il représentait 18 p. 100 de la production
intérieure brute et son revenu moyen était estimé à plus
de 15 milliards de CFA par an (13).
En 1976, après les dures années de sécheresse,
le taux est tombé à 12 P. 100. Mais en 1980, avec la recons-
titution du cheptel, la part de l'élevage dans l'économie
nationale atteignait 16 p. 100.
Les activités de commercialisation, d'abattages,
d'exportation d'animaux vivants et l'importance de la pro-
duction lattière et des cuirs et peaux en sont les manifes-
tations concrètes.
L'élevage nigérien est cependant soumis à l'action
des facteurs négatifs que sont la pauvreté du milieu, la
rudesse du climat, mais aussi les différentes affections
parasitaires et infectieuses ce qui nous conduit à l'étude
de l'état sanitaire du cheptel et plus particulièrement du
cheptel ovin et caprin.
I.2.5 - Etat sanitaire du cheptel ovin et caprin
I.2.5.1 - Les maladies d'origine micro-
bienne
- Les charbons bactéridien et symptomatique.
Ils existent à l'état enzootique dans le département de
Tahoua où chaque année ils déterminent un taux de morta-
lité assez important.

- 53 -
- les mammites d'origine diverse.
- la lymphadénite caséeuse qui ne préoccupe pas les éleveurs
car ne cause pas de mortalité.
- le piétin: affection saisonnière.
1.2.5.2 -Les maladies d'origine virale
- La clavelée ~ sévit dans tout le pays. C'est surtout sous
ses formes atypiques qu'elle est dangereuse. Au Niger, la
forme broncho-pulmonaire cause des ravages chez les .
agneaux et les brebis gestantes.
- L'ecthyma contagieux est une affection très répandue. Il
entraine une forte mortalité chez les agneaux.
- La peste des petits ruminants : qui existe au Nigeria~
n'a pas été signalée au NIGER.
- La fièvre aphteuse : semble exister, mais ses incidences
économiques sont négligeables.
1.2.5.3 - Affections d'origine parasitaire
- Polyparasitoses gastro-intestina les.
Nous citerons l'haemonchose, l'oesophagostomose, le
taeniasis~ la strongyloidose et la éoccidiose.
- Parasitoses externes :
C'est la gale qui est la plus fréquente. Elle provoque
une faiblesse de l'organisme et favorise ainsi l'installa-
tion de n'importe quèlle épizootie.
1.2.5.4 - Maladies nutritionnelles
Les plus fréquentes sont l'avitaminose A et les
carences en calcium et phosphore.

- 54 -
Ces facteurs pathologiques ont une importance consi-
dérable sur l'exploitation des petits ruminants.
Ils provoquent une mortalité des jeunes et une mordibité
élevée.
Mais si~nalons que, les mesures prophylactiques, quand elles
sont prises, ne concernent que les bovins.
En effet, chez les bovins, les maladies à l'origine
de grandes épizooties comme la peste bovine et la péripneu-
monie contagieuse bovine son~ combattues vigoureusement.
Cep -ndant, d'autres comme la brucellose et la t uber-
culose causent encore des problèmes à l'élevage bovin.
Quant à la FVR elle est complètement ignorée au
Niger. Depuis quelques années pourtant, elle a débordé de
son berceau pour gagner l'Egypte et d'autres pays en Afri-
que de l'Ouest! Pour savoir ce qu'il en était au NIGER,
nous avons entrepris une enquête sérologique sur les petits
ruminants, espèces les plus sensibles.

- 55 -
CHAPITRE If - ENQUËTE SUR LA FVR AU NIGER
===========================
II.1 - ENQUETE CLINIQUE
Les comnlémoratifs sur les antécédents pathologiques
des petits ruminants~ sont pauvres en particulier dans le
domaine des avortements, ce qui est regrettable.
En effet, il est èifficile, lors diune enquête
dans un élevage traditionnel, d'obtenir des renseignements.
Les difficultés sont dues soit à la réticence, soit à l'igno-
rance de l'éleveur.
C'est pourquoi, tous nos efforts ont porté sur l'enquête
sérologique.
II.2 - ENQUETE SEROLOGIQUE
Lienquête sérologique permet de se faire une idée
de l'importance de la circualtion du virus de la FVR et
d'apprécier l'immunité donc le degré de protection animale
contre le virus.
Nous avons entrepris d'évaluer, par sondage sérolo-
gique, l'incidence de la FVR sur quelques petits ruminants
du cheptel nigérien, ceci, dans les sept départements c'est-
à-dire AGADEZ, DIFFA, DOSSO, MARADI, NIAMEY, TAHOUA et ZINDER.
II.2.1 - r'latériels et Méthode--
II.2.1.1 - Le sang et les sérums
Le sang est prélevé (le matin ou le soir ~elon la
disponibilité des éleveurs) par ponction de la jugulaire
dans des tubes stériles de 10 ml (type Véneject ND) qui sont
ensuite mis au réfrigérateur.

- 56 -
Le sérum est récolté le même jour
après rétraction du cail-
lot, dans des flacons stériles et conservé au congélateur.
Cependant, les tubes qui n'ont pas donné de sérum après
décantation, ont été centrifugés.
Les prélèvements sont faits au hasard sans plani-
fication prélable sur des
ovins et caprins en élevage tra-
ditionnel sédentaire et à l'abattoir.
Mais à chaque fois, l'espèce
et le sexe de l'ani-
Inal donneur sont notés à liexception des prélèvements d'Aga-
dez et de Tahoua pour lesquels le sexe n'a pas été mentionné.
L'âge n'a pas été relevé mais la presque totalité
des prélèvements ont été réalisés chez des animaux d'au
moins un an.
Le transport des sérums s'est fait en glacière à
+ 4°C - + 8°C et à l'arrivée à Dakar, tous les sérums ont
été placés au congélateur en attendant leur exploitation.
1200 sérums, récoltés au cours des mois de Janvier
et Février 1986, sont ainsi parvenus au laboratoire de l'Eco-
le Inter-Etats des Sciences et Médecine Vétérinaires de
Dakar (E.I.S.M.V.)
L'analyse des sérums n'a débuté qu'au mois d'Avril
au Laboratoire de Virologie de l'Institut Pasteur de Dakar
qui a bien voulu nous apporter son concours dans ce domaine,
ce dont nous lui sommes vivement reconnaissants.
II.2.1.2 - Les antigènes
- Préparation de l'antigène FVR.
Il s'agit de la souche ARB 1976 de virus de la FVR, multi-
pliée sur cultures de cellules Vero.

- 57 -
Après la récolte, les cellules infectées sont lavées
puis mises en suspension dans du PBS (Solution Tampon) et
réparties ~~r une lame spéciale comportânt 12 cercles.
la répartition terminée, les lames sont mises à
sécher à l'étuve à 37°C.
La dernière phase consiste à fixer les cellules en
plongeant les lames dans de l'acétone refroidi pendant 10
minutes.
- Conservation.
Les lames ainsi préparées, sont conservées au congé-
lateur à -70°C pr~tes à li emploi.
Les antigènes des virus apparentés au virus de la FVR.
Il siagit de virus appartenant au genre phlébovirus de la
famille des Bunyaviridae. Nous les avons utilisés pour
étudier les réactions croisées avec le virus de la FVR.
Ce sont les antigènes: SAINT-FLORIS, GORDIL et ARUMOWOT
(souches de référence).
II.2.1.3 - Les immunoglobulinesmarguées
Ce sont les immunoglobulines G (IgG) anti-mouton
et anti-chèvre préparées sur lapin et marquées à l'isothio-
cyanate de Fluoresceine (Laboratoires Biosys).
II.2.1.4 - Méthode sérologique
Nous avons utilisé l'immunofluorescence.
Principe
Cette méthode permet de visualiser le complexe
"Antigène - anticorpsH (Ag - Ac).
Lorsqu'on met l'antigène en présence de l'anticorps
fluorescent, il y a fixation spécifique de l'anticorps sur
l'antigène. Le complexe Ag-Ac devient alors fluorescent.

- 58 -
Ceci est observable en lumière bleu violette ou ultra-
violette.
Réalisation
La technique utilisée est lYi~~unofluorescence
indirecte.
Cette variante comporte deux temps et convient
à la recherche d'anticorps dans un sérum au moyen d'un frot-
tis réalisé avec l'antigène correspondant.
Elle fait intervenir un réactif supplémentaire
une antiglobuline fluorescente qui sert d'indicateur ii mar-
qué" de la réaction Ag-Ac.
Cette antiglobuline provient du sérum d'un animal
hyper-immunisé avec une globuline de liespèce à laquelle
appartient le sérum à examiner.
- Dans un premier temps~ le sérum à examiner est
décomplémenté~ puis déposé sur la préparation antigénique
connue.
Le complexe antigène - anticorps formé (si le sérum
contient des anticorps) est invisible~ les anticorps n 7 étant
pas marqués.
- Dans un deuxième temps~ après lavage de la pré-
paration~ on révèle la présence du complexe au moyen de
11 antiglobuline IImarquéeil anti mouton ou anti chèvre que
l'on dépose sur la lame.
Au bout de 30 minutes d'incubation à l'étuve à
37°C, la lame est lavée pour éliminer l'excédent 1'immuno-
globuline marquée puis examinée au microscope à fluorescence.

- 59 -
Lianticorps du sérum joue le rôle d'anticorps dans
le premier temps et d'antigène dans le second. La positivité
d'une réaction se traduit par la présence au microscope de
cellules à granulations d'un vert jaunâtre. A côté de ces
cellules dites positives~ on peut observer des cellules
rouges dites négatives sur lesquelles l'anticorps ne s'est
pas fixé.
Lorsque la réaction est négative, l'ensemble des
cellules présente une couleur rouge non fluorescente.
Dans un premier temps~ tous les sérums dilués au 1/16e sont
soumis à
la réaction.
Les sérums reconnus positifs sont ensuite titrés à la dilu-
tion 1/16~ 1/32~ 1/64 et 1/128.
Certaines réactions furent délicates à lire mais
au cours du titrage des sérums
supposés positifs~ le doute
fut levé.
II.2.1.5 - Méthode statistique
Nous avons utilisé la méthode statistiquE' du test
de CHi 2 relative à la comparaison de deux pourcentages avec
un risque d'erreur de 5 p. 100.
II.2.2 - Résultats
II.2.2.1 - Les résultats ~ar localité
~t d' ensemb le.
Il ressort du tableau LI ,;; page 60 que sur les 1 200 Sérums
traités~ seuls 33 sont positifs soit un taux de sérologie
de 2~8 p. 100 en moyenne pour l'ensemble des sérums. Le
nombre des sérums positifs est donc faible.

- 60 -
TABLEAU
,-
Régions
Nbr~ de sérums
Sérums
Pourcentage
testés
positifs
p. 100
AGADEZ
295
8-
2,7
TAHOUA
PIFFA
111
2
1,8
DOSSO
145
2
1,4
MARADI
241
7
2,9
NIAMEY
263
5
1,9
ZINDER
145
9
6,2
Total
1 200
33
2,8 P .100 + 0,9
-
II.2.2.2 - Les variations selon les loca-
lités
Le
table~u LE montre que la préva-
lence de sérologie positive varie avec les régions. Elle va
de 1,4 p. 100 à Dosso à 6,2 p. 100 à Zinder.
Cependant, liétude statistique des résultats en
fonction des régions, nous montre que la différence des pour-
centages n'est significative quientre Zinder et Dosso, Zinder
et Niamey.
D'après ce tableau 'II"
Zinder vient en tête avec
6,2 p. 100, ensuite se situeraient un groupe intermédiaire
avec Maradi - Agadez (environ 3 p. 100) puis Niamey et Diffa
(environ 2 p. 100) et enfin Dosso (1,4 p. 100). Il Y a là
une tendance à noter qui pourrait se vérifier par des études
complémentaires et des effectifs plus importants.

- 61 -
II.2.2.3 - Variations selon les espèces
Ce sont les tableaux llI:ct lV qui illustrent
ces variations.
TABLEAU . III
Taux de sérologie positive chez les moutons
en fonction des régions.
Région
Sérums
Sérums
Pourcentage
testés
positifs
p.
100
AGADEZ
145
6
4;11
MARADI
130
5
3:;8
ZINDER
107
8
7;15
NIAMEY
120
3
2;15
DOSSO
55
1
1;18
DIFFA
0
0
0:;0
TOTAL
557
23
4;11.:t 1;17
TABLEAU I~" ]1f: Taux de sérologie positIve chez les chèvres.
Régions
Sérums ',testés
Sérums,pes±tifs
Pourcentages
AGADEZ
150
2
1;13
MARADI
111
2
1;18
ZINDER
38
.L
2:;6
NIAMEY
143
2
1,4
DOSSO
90
1
1;11
DIFFA
111
2
1;18
TOTAL
643
10
1:;6 + 1:;0

- 62 -
Ainsi
nous relevons une prévalence de sérologie
s
positive de 4s 1 p. 100 chez les moutons et de 1~6 p. 100
chez les chèvres.
Dans nos conditions de travail (échantillon~ tech-
nique~ imaladieli)~ liinterprétation statistique ne peut mettre
en évidence des différences sign1~icatives entre les moutons
et les chèvres.
Nous pouvons donc formuler Jes mêmes réserves que précédem-
ment.
II.2.2.4 = Titres des sérums positifs
vis-à-vis de liantigène FVR
TABLEAU
y
Répartition de la sérologie positive en fonc-
fonction de la dilution et des localités chez
les moutons.
i
Titres
AGADEZ
~1ARADI
ZINDER
NIAMEY
DOSSO i DIFFA
TAHOUA
),
128
6 sérums
3
5
2
-
-
64
-
=
3
-
1
-
32
-
2
-
1
=
~

- 63 -
TABLEAU
,
Titres
AGADEZ
MARADI
ZTh'DER
NUlYlEY
DOSSO
DIFFA
TAH OUA
),
128
1
1
.'
-
...
--
1
64
~
=
1
-
1
1
;
32
1
-
.~
1
-
=
16
-
1
~
-
-
~"'"
Les résultats du titrage des sérums positifs sont
rapportés par les tableaux
V
et
VI.
Nous constatons que sur les 33 sérums positifs
20
ont un titre supérieur ou égal à 128 et 13 sérums ont
un titre inférieur à 128.
Comme nous Itavons souligné dans21e' diagnostic sérologique
de la FVR~ la méthode dYillli~unofluorescence a comme inconvé-
nient de détecter les réactions croisées avec dtautres virus
appartenant au groupe des fièvres à phlébotomes.
Dans le souci de poser un diagnostic précis de la
FVR~ nous avons étudié les réponses des sérums vis-à-vis
des phlébovirus présents en Afrique (à savoir lYantigène
Gordil s liantigène SAINT-FLORIS et llantigène Arumowot).
- Dans un premier temps~ nous avons étudié les relations
antigéniques de ces différents virus par la réaction diimmu-
nofluorescence indirecte (IFI) au moyen diascites de souris
hyper-immunes (IA~o Les résultats sont mentionnés dans le
tableau
VII - page 64.

=
64 ~,
.TABLEAU
VII: Relations antigéniques au moyen de la réaction
d'IFI des phlébovirus africains.
,
Antigènes (Ag)
Immunascites
\\
(lA)
RVF
GORDTL
SAINT
ARUl\\10WOT
FLORIS
RVF
1280
80
120
N
- -
GORDIL
Négatif
320
8

N
SAINT
20
20
}
640
N
FLORIS
N
N
~
..... ~.'.
.. .
,~
ARUtJIOWOT
N
N
N
160
--
Les chiffres correspondent au titre des lA mis en
présen~e des différents Ag. Les titres les plus élevés sont
obtenus avec les Ag homologues. Avec les Ag hétérologues~
la
réponse est faible.
Dans un deuxième temps~ nous avons passé
tous nos
sérums positifs vis=à-vis de l'Ag FVR sur les trois antigènes
du groupe.
Tous les sérums positifs vis~à~vis de l'Ag FVR se
sont révélés négatifs avec les antigènes GORD IL et SAINT
FLORIS.
Par contre~ certains (13 sérums sur les 33) ont don-
né des réponses positives avec l'Ag ARUMOWŒr(voir
tableau
VIII) •
En résumé~ comme nous le consigne le tableau VIII
de la page 65, sur les 33 sérums positifs vis-à-vis de l'Ag.
FVR, il ya
13 qui se révèlent positi~, également à l'Ag
ARUMOWOT.
Les titres de ces sérums figurent dans le tableau
IX ~. page 65.

- 65 -
~T~AB~L~E~A~U~__VI_II :Répartition des sérums positifs à l'Ag FVR
et à l'Ag
ARUMOWOT en fonction des régions.
Région
Positivité
i Posivitivé
Positivité
à l'Ag. FVR seul
à FVR et ARU
FVR total
AGADEZ
4
4
8
TAHOUA
MARADI
5
2
7
ZINDER
5
4
9
NIAMEY
2
3
5
DOSSO
2
a
2
DIFFA
2
a
2
.
TOTAL
20
13
33
ARU = ARUMOWOT
TABLEAU __ IX : Comparaison des Titres pour les 13 sérums
positifs vis-à-vis de l'Ag FVR et di liAge
ARUMOWOT
1
Sérums
Titres obtenus
Titres obtenus
J
avec· l'Ag. FVR
avec l'Ag. ARUMOWO
N° 1
128
64
N° 2
)
128
16
f
N° 3
128
128
N° 4
) 128"
10
N° 5
32
32
N° 6
}
128
16
N° 7
64
16
N° 8
64
32
N° 9
)
128
16
N° la
)
128
32
N° 11
)
128
)
128
N° 12
32
10
N° 13
)
128
16

- 66 -
Ainsi, parmi les 13 sérums, seuls deux présentent
des titres égaux vis-à-vis de lVantigène FVR et de lVantigè-
ne ~RUMOWOT..
Pour lès Il autres, le titre obtenD ave~ l'antigène
FVR est supérieur à celui obtenu avec l'antigène ARUMOWOT.
Nous commenterons cela dans le chapitre disrussions.

- 67 -
CHAPITRE III - DISCUSSIONS
-----------
-----------
Les résultats obtenus lors de notre enquête néces-
sitent un certain nombre de commentaires. De même, les dif-
férentes étapes de ce travail méritent de faire 19 0 bjet d'une
analyse. Disons tout de suite que notre travail a souffert
du peu de temps que nous avions pour le réaliser.
111.1 -
MATERIELS ET METHODE
111.1.1 - Matériels
Le choix des espèces ovine et caprine pour notre
étude a été guidée par le fait que ce sont les espèces les
plus sensibles à la FVR.
Il n 9 y a aucun. critère quant au choix de la race,
du sexe, de l'âge et du nombre des animaux concernés par .",
région : le sondage a été fait selon le hasard des rencon-
tres sans plan d'échantillonnage préétabli.
Les prélèvements ont été réalisés en élevage sédentaire
(dans les villages entourant les grandes villes) ou à
l'abattoir.
Le choix de ne s'intéresser qu'aux animaux de .. !
. • . -
l'abattoir et des grandes villes peut être critiqué. Mais
il s'explique par le temps limité dont nous disposions, des
moyens de déplacements réduits et par la facilité de récol-
ter les échantillons dans ces lieux.
Le matériel de prélèvement était représenté par
des tubes de 10 ml (type Venoject ND) stériles mais pas sous
vide car la commande des tubes neufs (avec vide) tardait à
être livrée.

- 6~ -
Nous étions donc contraintsdc ponctionner la veine
à l'aide d'une aiguille afin de récolter le sang. Nos prélè-
vements ont été faits à l'air libre pendant la période des
vents de sable. Ces conditions de travail ont été à l'origine
de la contamination de la majorité de nos prélèvements~ ce
qui a rendu impossible l'épreuve de séroneutralisation qui
exige un prélèvement aseptique.
111.1.2 - La Méthode
Le virus de la FVR provoque l'apparition dans l'org:miSlœ des
anticorps spé~ifiques qui peuvent être mis en évidence par
différentes techniquesde laboratoire.
Nous avons utilisé la méthode d'immunofluorescence indirecte.
Les avantages et inconvénients de cette méthode ont
été mentionnés dans le diagnostic sérologique.
Le choix de cette méthode peut s'expliquer par plu-
sieurs raisons :
- L'immunofluorescence~ bien que présentant certains inconvé-
nients~ est une méthode sensible~ bon marché et rapideo
- La fixation du complément bien que souvent utilisée présen-
te une sensibilité limitée.
En plus~ elle est réservée au diagnostic des pous-
sées épidémiques en cours ou des cas isolés suspects de FVR.
Ce qui niest pas le cas dans notre travail.
- On a également souvent recours à l'inhibition de l'hémag-
glutination qui exige la préparation d'un Ag hémagglutinant
qui n'est pas disponible au laboratoire des virus de l'Ins-
titut Pasteur de Dakar.

- 69 -
- La séroneutralisation utilisée comme technique de référen-
ce n'a pu être réalisée du fait de la contamination des
sérums.
En résumé, l'épreuve d'immunofluorescence était
la seule méthode à notre portée dans nos conditions de tra-
vail et d'autres auteurs l'ont utilisée (25). De plus, c'est
une méthode bien adaptée à des enquêtes épidémiologiques.
111.2 - LES RESULTATS
L'enquête sérologique que nous avons réalisée sur
quelques ovins et caprins de différentes races du cheptel
nigérien nous a permis de mettre en évidence une prévalence
sérologique de 2,8 p. 100 chez ces espèces.
Les résultats sont variables suivant les régions
mais aussi suivant les deux
espèces concernées par cette
enquête.
Les variations départementales sont liées sans
doute aux modes d'élevage et aux conditions climatiques et
hydrographiques qui prévalent dans différentes régions.
On pourrait s'attendre, en raison de la présence
du fleuve qui détermine un microclimat humide favorable à
la multiplication des insectes vecteurs à relever le taux
de sérologie positive le plus important dans le département
de Niamey. Mais tel n'est pas le cas. Ce taux de 1,9 p. 100
à Niamey est moins important que celui de Zinder qui est de
6,2 p. 100.
Ors le département de Zinder~ présente un climat aride, sub-
désertique défavorable à la multiplication· des vecteurs.
Cependant, nous ne devons pas être surpris de ces
résultats car la plupart des prélèvements de Niamey provien-
nent de l'abattoir. Par conséquent, nous ignorons l'origine
exacte de ces animaux.

- 70 -
Ils peuvent bien provenir de localités éloignées du fleuve
et même des autres régions.
En plus, le fleuve est certes favorable à la ponte
des oeufs diinsectes mais peut en même temps siot1poser à
l'éclosion de ces derniers en les entra!nant car ce niest
pas une eau stagnante.
Les retenues dieau comme les mares, les étangs et
eaux d'irrigation sont plus propices à la multiplication
des insectes.
Ces retenues dieau, on les rencontre un peu partout
au NIGER quielles soient permanentes ou temporaires.
Le département de Zinder présente le taux de séro-
positivité le plus élevé (6,2 p. 100) vient ensuite celui
de Maradi (2,9 p. 100). Ces deux départements sont à proxi-
mité du Nigéria où le virus a déjà été isolé (23). Il est
donc possible que ces deux départements soient liobjet d'un
débordement du virus à partir des foyers invétérés nigérians.
Les prélèvements de Zinder ont été effectués pour
la plupart à liabattoir sur des animaux tout venant pouvant
provenir du Nigéria. Mais aussi des troupeaux ayant séjour-
né dans une zone de réservoir invétérée nigérianne lors de
la transhumance annuelle vers le Sud.
Le département de DIFFA quant à lui a enregistré
une faible prévalence (1,8 p. 100). C'est le département qui
fait frontière avec le Tchad.
Des sondages sérologiques sur des petits ruminants et rumi-
nants sauvages ont été effectués au Tchad et au Cameroun en
1969 par MAURICE et PROVOST (37).
Ces sondages
;ont mis en évidence la présence dian-
ticorps contre la FVR chez ces espèces.

- 71 -
Ainsi~ chez les ruminants sauvages du Tchad il y avait une
prévalence sérologique de 48~48 p. 100.
Chez les moutons du Tchad et du Cameroun elle était
de 20~14 p. 100.
Les sérums ont été testés par la méthode d'inhibi-
tion de l'hémagglutination ; donc ces résultats ne sont pas
comparables avec ceux que nous avons obtenus.
Toutefois, ils suggèrent une importante activité
du virus de la FVR en 1969
pouvant traduire une poussée
épizootique. C'est pourquoi, à Diffa~on pourrait siattendre
à des résutlats plus significatifs.
Mais notons que les prélèvements de ce département
se sont limités aux villages entourant la ville de Diffa~
villages qui pratiquent l'élevage sédentaire.
Il se pourrait aussi que le véhicule du virus du
Tchad vers le NIGER soit peu efficace ou quiil ait rencon-
tré une barrière naturelle.
Sans être affirmatif~ nous pourrions évoquer aussi
l'influence de la longue période de sécheresse quia connu
le Sahel ces dernières années s ce qui aurait pour conséquen-
ce de rendre l'environnement défavorable aux vecteurs et
donc les rendre moins efficaces. Ceci expliquerait la faible
prévalence enregistrée.
Toute enquête ponctuelle, niapportera aucun élément
nouveau. Il est nécessaire dieffectuer une surveillance con-
tinue des troupeaux.
Avant de clore ce chapitre discussion, il serait
logique diinterprêter les résultats obtenus avec les virus
apparentés au virus de la FVRo

- 72 -
En effet, IVétude des relations antigéniques entre
le virus de la FVR et les virus apparentés nous a permis de
déceler sur les 33 sérums positifs vis-à-vis de IVantigène
FVR, 13 Rérums positifs avec l'antigène ARUMOWOT. Comme nous
le montre le tableau YII
de la page 64
l'antigène Arumowot
ne réagit qu'avec les immunascites anti-Arumowot. Ce qui nous
permet de dire que si ces animaux ont répondu positivement,
cVest qu'ils ont été sûrement en contact avec ce virus appa-
renté.
Ces résultats nous ont amené à étudier IVéventuelle
circulation du virus ARUMOWOT, dans le bétail au Niger.
95 sérums qui se sont avérés négatifs avec IVanti-
gène FVR ont été testés vis-à-vis de IVantigène ARUMOWOT,
selon les mêmes conditions techniques précédemment rapportées.
Au total 5 sérums ont été trouvés positifs. Ces
sérums se sont révélés négatifs avec les antigènes GORDIL
et SAINT-FLORIS.
Nous pouvons donc conclure au vu de ces résultats,
qu'à côté du virus de la FVR, circule un autre phlébovirus.
Conclusion
Les résultats obtenus lors de notre enquête, bien
que partiels, révèlent une très faible circulation du virus
de la FVR sans doute sous une forme occulte ou enzootique.
En effet, officiellement, les services vétérinaires
ne mentionnent aucun cas de FVR.
Mais cela peut être dû à la méconnaissan~e de cette
maladie.
La fièvre de la Vallée du Rift, bien que ne consti-
tuant pas encore un problème au NIGER, doit cependant atti-
rer IVattention des vétérinaires car il nVest pas exclu

- 73 -
qu'une épizootie s'installe à la suite d'une forte pluvio~
métrie.
La FVR a été à l'origine d'importants dégâts dans
le bétail de certains pays africains. Elle a suscité ainsi
la mise en p.lace de méthodes de lutte efficaces~ lutte qui
fera 19 0 bjet de la troisième partie de notre travail.

- 74 -
T R 0 1° SIE ME
PAR T 1 E
METHODES, DE LUTTE ET -MISE EN OEUVRE
-----------------------------------------
---------------------------------~-------
AU
NIGER
----------
----------

- 75 -
CHAPITRE
1 -
MÉTHODES GÉNÉRALES DE LUTTE
---_.-----~~~~~~-~--~~---~--
---_&_---------~--~---------
Aucun traitement antibiotique des animaux atteints
de FVR n'est efficace. C'est pourquoi en matière de lutte, on
devrait avoir recours aux mesures prophylactiques.
Les mesures de prophylaxie opposées à la FVR au cours
des épizooties périodiques en Afrique ont surtout consisté à
vacciner les principaux hôtes réceptifs à la maladie. Chez
l'homme pour lequel il n'existe aucun traitement étiologique
on mettra en oeuvre une thérapeutique symptômatique à base de
pénicilline et de sulfadiazine à doses élevées.
En général, les populations humaines n'ont pas été
touchées au point de rendre la prophylaxie indispensable.
La lutte contre les populations d'arthropodes vecteurs,
bien que délaissée souvent, est cependant reconnue comme un
moyen de lutte effica 0 8 et nécessaire dans les deltas et zones
irriguées où la fièvre de la vallée du Rift a fait son appari-
tion sous forme épizootique.
En plus, l'importa:~~n d'animaux ou de carcasses
virémiques depuis ces zones sont un danger potentiel d'intro-
duction de la FVR qu'il ne faut pas perdre de vue dans l'éla-
boration des mesures de lutte efficaces.
Nous pouvons donc dire que la prophylaxie de la FVR est à la
fois médicale et sani~aire.
1.1 - LA PROPHYLAXIE MEDICALE
Elle est basée sur l'immunisation qui est l'acte
prophylactique consistant à conférer l'immunité.
On distingue deux types d'immunisation
active et
passive.

- 76 -
1.1.1 - L'immunisati~assive
L' j -w.J.tmisation passive est possible par inoculation
par la voie sous-cutanée d'un sérum hyperimmun. Mais l'immuni-
té conférée par le sérum est de courte durée (15 jours).
WEISS (54) d'autre part a mis en évidence une immunité co1os-
tra1e pouvant durer 3 à 5 mois chez les jeunes~ à condition
que le colostrum soit absorbé dans les 24 premières heures
de la vie.
Cette immunité est conférée par la transmission
des anticorps sériques de mère vaccinée à
nQuveau-nés.
1.1.2 - L'immunisation active
la vaccination
1.1.2.1 - Considérations génjra1es
La méthode la plus efficace pour combattre la fièvre
de la vallée du Rift consiste à immuniser les animaux sensibles
à l'aide d'un vaccin puissant.
Depuis la première identification du virus de la
fièvre de la vallée du Rift~ il a été mis au point des vaccins
destinés à fournir un moyen de protéger efficacement tant
l'homme que les animaux contre la maladie et ainsi d'empêcher
l'apparition de vastes épizooties. La vaccination des animaux
sensibles contre la FVR offre d'importants avantages
- Elle previent ou réduit considérablement les per-
tes économiques liées à la mort du bétail.
- Elle élimine ou restreint fortement le risque
d'avortement dû à la FVR chez les femelles gravides sensibles.
- Elle freine le développement du virus de la FVR
dans le cheptel~ ce qui diminue les dangers d'infection humai-
ne par transmission directe ou par vecteur.

- 77 -
I.1.2.2 - Les vaccins dis2onib1es
Pour l'usage vétérinaire~ deux tYP$de préparation'
sont disponibles :
- Un vaccin vivant atténué.
- Un vaccin inactivé ou tué.
Chacun présente des . avantages et des inconvénients qui seront
décrits ci-dessous.
Il existe également un vaccin inactivé pour l'utili-
sation humaine : on le trouve en quantités limitées et il
n'est généralement administré qu'à des personnes courant un
grand risque d'exposition.
I.1.2.2.1 - Le vaccin atténué à usage
vétérinaire
Il est produit en Afrique du Sud et au Kenya. Ce
type de vaccin est à base de virus vivant dont la virulence à
l'égard des animaux a été fortement réduite.
Les souches neurotropes du virus sont largement em-
ployées car les souches viscérotropes sont dangereuses à mani-
puler en laboratoire (45).
Ces avantages sont : un faible coût de production,
la facilité de préparation en grande quantité en un temps très
court, sa conservation au froid pendant d2 longues périodes
et sa grande activité.
Correctement administré~ le vaccin vivant atténué
confère une résistance solide à la fi~~re de la vallée du Rift.
Il est hautement efficace pour protéger l'animal
vacciné~ donnant une immunité qui dure plusieurs années, sinon
la vie.

- 78 -
Malheureusement, ce vaccin atténué comporte certains
inconvénients.
Bovins, ovins et caprins peuvent être immunisés par
ce type de vaccin, mais il ne provoque pas l'apparition de
titres d'anticorps élevés chez les premiers. C'est pourquoi,
les veaux nés
de vaches immunisées ne trouvent àans le colos-
trum qu'une très petite quantité d'anticorps pour les protéger
durant les premiers mois ; période où ils sont les plus sensi-
bles à la FVR.
L'utilisation de vaccin vivant atténué comporte
d'autres inconvénients. C'est ainsi que ce produit peut entraî-
ner des avortements ou des anomalies foetales s'il est inoculé
au cours du premier mois de gestation.
Enfin, il n'est pas exclu que le virus récupère
sa virulence chez certains animaux vaccinés. Ainsi, le vaccin
à virus vivant ne doit par conséquent jamais être utilisé en
dehors des régions où la FVR existe déjà.
1.1.2.2.2 - Les vaccins inactivés
contre la FVR
- Vaccinsinactiv~à usage vétérinaire.
Ils consistent en des
suspensions relativement con-
centrées du virus virulent inactivé par le formaldéhyde
ou
d'autres substances chimiques comme la Béta propi0lactone.
Ces vaccins induisent une immunité du fait que la
suspension virale relativement concentrée, mais dépourvue du
pouvoir de replication, est présente en quantités suffisantes
pour stimuler le développement de cellules productrices d'an-
ticorps dans l'organisme animal.
Ces vaccins inactivés sont beaucoup plus sûrs~ mais
en général moins actifs que le vaccin atténué.

- 80 -
L' immuni té con1'é!"sG est d'environ 2 ans,
mais il
faut reconnaître que C2 vaccin cst d8 préparation onéreuse,
ce qui le fait écarter pour la vaccination des animaux.
Son prix élevé et la faiblesse des quantités dispo-
nibles le font réserver aux personnes dont la profession com-
porte un risque important d'exposition au virus. Il sert donc
à immuniser le personnel de laboratoire, les vétérinaires et
autres professionnels susceptibles de se trouver en contact
avec le virus dans l! accompll.r sement de leurs tâches.
On peut s'en procurer auprès de l'Organisation Mon-
diale de la Santé (OMS~ à Genève.
De nombreuses circonstar:cE:'s r;~n(12nt légitime l' uti-
lisation des vaccins contre la FVR.
Tout programme de vaccirv.l~ior:.. e;:iLe un investisse-
ment et son coût doit être mis en balance avec 1er, avantages
concrets ou potentiels que l'on peut en tirer.
Dans la mesure où le bétail dome~tique sensible
est concerné, ces avantages sont substantiels.
Les animaux do~estiques exportés d'~ne l~égion d'enzootie
vers une autre indemne de FVR~ peuvent avoir ~~~in d'une
vaccination en application des normss sanitaires vétérinai-
res des pays importateurs. DaoG
ces conditions, une seule
injection ~9 vaccin inactivé laitq 10 jours avant l'arrivée
à destination conférerait une garantie notable contre l'in-
troduction de la maladie. Allonger ces délais ne 10nnerait
q'une sécurité légèrement 8up6~ie~re.

- 81 -
Dans une région où lion sait que le virus de la FVR
existe et quiil donne lieu à une enzootie ou à des manifesta-
tions diactivité périodique~ les animaux peuvent être vaccinés
soit à liaide diun vaccin vivant atténué~ soit à liaide diun
vaccin inactivé.
Quand les moyens financiers sont limitœ,~ il est
avantageux diutiliser le vaccin vivant atténué du fait de son
prix de revient faible.
Dans une contrée exempte de FVR~ mais nettement menacée par
la propagation du virus il est extrêmement intéressant de
vacciner les animaux indigènes contre la maladie ..
Dans ces conditions~ une ou deux injections de vaccin inac-
tivé contre la FVR faite à 2 -
4 semaines diintervalle don-
nent une immunité notable pendant un an au moins. Des rappels
annuels sont nécessaires pour maintenir un titr~ élevé dianti-
eorps chez les animaux précédemment immunisés et pour provo-
quer une réponse immunitaire chez les animaux sensibles qui
niauraient pas participé à la première séance de vaccination.
Le groupe de personnes qui courent un risque sera
informé des risques de contagion
et des avantages de la vac-
cination contre la FVR et on leur offrira la possibilité de
se faire vacciner si elles le désirent. Ces personnes travail-
lent en général dans des laboratoires de diagnostic ou sur le
terrain à sVoccuper dianimaux~
ce qui peut comporter des
occasions diexposition au virus. Le vaccin inactivé à usage
humain est le seul qui soit utilisable dans ce cas.
On peut associer les mesures sanitaires à la vacci-
nation.

- 82 -
1.2 - PROPHYLAXIE SANITAIRE
Elle a pour but de détruire le virus partout où
il se trouve.
AInsi elle reposera sur la lutte contre les insec-
tes
et la lutte contre l'infection.
1.2.1 - Lutte contre les insectes
S'il existe de nombreux arguments pour montrer que
les moustiques sont les principaux responsables de la trans-
mission de la FVR au cours des épizooties en Afrique de l'Est
et du Sud~ le fait n'est pas prouvé dans les nouvelles régions
irriguées où sévit la FVR
encore que l'application de mesures
de lutte anti-vectorielle ait provoqué une régression specta-
culaire du nombre de cas observés.
Les méthodes de lutte contre les insectes ont un
certain intérêt
mais il faut tenir compte des effets sur
3
l'environnement d'une large dissémination d'insecticides avant
de mettre en oeuvre de vastes programmes de lutte contre les
vecteurs. Il y a deux catégories de mesures
1.2.1.1 - Mesures d'urgence
Elles seront prises lors d'une flambéR de FVR afin
de réduire la densité de la population des vecteurs et pour
arrêter ou limiter très énergiquement la transmission.
On peut y arriver en utilisant un insecticide chi-
mique à action rapide pendant une brève période afin de cou-
vrir les zones d'épizootie ou d'enzootie.
Les pulvérisations spatiales sont en général les
plus appropriées aux situations d'épidémie et peuvent être
exécutées à partir du sol ou par voie aérl~nne. On peut
utiliser :

- des larvicides
Ils peuvent être dirigés contre les gltes larvaires.
Ils conviennent pour les cas où il se produit une pullulation
locale dVinsectes.
- des insec~icides de contact à effet remanent.
Ils sont applicables dans les habitations lorsqu'on
sait que l~s vecteurs suspectés sont fortement endophiles.
Il convient cependant de déterminer au préalable la
sensibilité des vecteurs impliqués à l'insecticide dont IV em-
ploi est envisagé.
LVapplication des méthodes de lutte contre les insec-
tes sera soutenue par un ~rograrnrne destiné à évaluer liinflu-
ence de ces méthodes sur la population de vecteurs.
Il faudra instituer aussi une éducation sanitaire afin d'encou-
rager IVemploi de précautions élémentaires contre les mousti-
ques.
1.2.1.2 - Mesures de lutte possibles en
périodes inter-épizootiques
1.2.1.2,1 - Applications dVinsectici-
des de contact à effet remanent
Quand cm a affaire à des vecteurs endophiles ~ l vappli-
cation de ces insecticides à l'intérieur des constructions
qui servent de lieux de repos aux vecteurs a un effet préven-
tif dVendiguement sur la population de moustiques.
Elle établit ainsi un cordon sanitaire autour des
foyers de IVépisode initial.

- 84 -
1.2.1.2.2 -
Utilisation de larvicides
Dans certains cas
les opérations larvicides dirigées
j
contre les principaux g1tes larvaires peuvent contribuer à
maintenir la population des vecteurs
supposés en dessous du
seuil à partir duquel une épidémie ou une épizootie risque de
se déclarer.
1.2.2 - Lutte contre la maladie
1.2.2.1 ~ Les travaux d'aménagement de
l'environnement
Dans de nombreux cas
certaines mesures relatives
j
à l'environnement par exemple l'amélioration de l'écoulement
et de la distribution des effluents et de l'eau peuvent cons-
tituer les meilleures dispositions à long terme pour prévenir
les épisodes de FVR transmise par les moustiques.
1.2.2.2 - Abattage des animaux infectés
L'abattage des animaux infectés est une opération
qui conna1t de grands risques de contagion des individus par-
ticipant à cette tâche.
En plus, au cours d'épizooties de FVR on enregistre
de nombreux cas d'infections inapparentes chez les animaux.
Par conséquent, cette mesure d'abattage des animaux
infectés, habituellement utilisée,ne saurait être recommandée
dans le cas de la FVR.
Les cadavres seront enterrés sous le contrôle d'un
vétérinaire.
Il faut reconna1tre que la prophylaxie sanitaire de la FVR
est dificile à réaliser.

- 85 -
En effet~ si lion peut mettre en oeuvre des moyens
dans le cadre de la lutte anti-moustique, et ce niest pas
facile~ i l demeure que cette lutte dans les régions concernées
ne suffit pas puisque l'épidémiologie de la maladie nous fait
constater la présence de nombreuses espèces animales pouvant
être des réservoirs de virus (buffles~ antilopes~ rongeurs
sauvages). C'est pourquoi~ la vaccination prend dans ce cas,
une importance particulière.
Comment appliquer ces méthodes de lutte au NIGER ?

- 86 -
CHAPITRE II -
HISE EN OEUVRE AU NIGER
--------------~--------
-----------------------
LVétude de la prophylaxie de la FVR en général~ nous
amène à nous intéresser à son application au NIGER.
Signalons quVà IVheure actuelle~ aucune base légale
de lutte contre la FVR niexiste dans ce pays diautant plus
que la maladie est ignorée dans le contexte actuel de IVéle-
vage du bétail au Niger (Elevage transhumant~ absence d'une
surveillance rigoureuse des animaux et de la recherche des
facteurs abortifs).
La prévalence sérologique que nous avons révélée
chez les petits ruminants ne justifie pas en ell~mela mise
en oeuvre d'un plan de lutte contre la FVR.
A IVévidence~ une telle opération serait non renta-
ble au vu des résultats que nous avons obtenus au NIGER.
Néanmoins, pour éviter que la circulation de ce
virus ne prenne une trop grande proportion dans un proche
avenir et en prévision dVune intensification de l'élevage des
bovins et ovins en vue de satisfaire les besoins de plus en
plus croissants en protéines animales, il est possible d'en-
visager des actions sur le plan sanitaire et médical ceci
dans le cadre de la lutte contre les affections abortives du
bétail en général.
1.1 - PROPHYLAXIE SANITAIRE
Elle sera basée essentiellement sur la surveillance
des animaux (surveillance clinique et sérologique) mais aussi
sur la lutte contre les insectes.

- 87 -
II.1.1 - La surveillance
Elle doit d'abord révéler la maladie sur la base de
manifestations cliniques que sont la forte mortalité chez les
jeunes et les avortements chez les femelles gestantes, mais
aussi l'infection basée sur les recherches sérologiques.
Il faut cependant reconnaître que cette surveillance
clinique n'est pas facile pour plusieurs raisons
- le manque de personnel qualifié
- le mode d'élevage qui ne favorise pas un tel
diagnostic
- la confusion possible avec d'autres maladies
abortives.
En effet, la fièvre Q~ la chlamydiose ovine et la
brucellose Be manifestent également par des avortements.
Par conséquent, la FVR doit trouver sa place dans
la recherche de l'étiologie des affections abortives du bétail.
Ainsi~ lors d'avortements chez les espèces sensibles,
à savoir bovins, ovins et caprins~ il ne faut pas systématique-
ment penser seulement à la brucellose qui est une maladie bien
oonnue chez le
gros bétail et ignorer les autres affections
abortives.
Il faut chercher à déterminer l'étiologie c'est-à-
dire procéder à l'isolement et l'identification du germe res-
ponsable (bactérie ou virus) à partir des avortons, des annexes
foetale~ etc.
La recherche sérologique polyvalente dand les effec-
tifs où surviennent les avortements doit être un réflexe chez
l'homme du terrain et de laboratoire.

- 88 -
De nombreuses épreuves sérologiques sont utilisables,
comme nous l'avons indiqué dans le diagnostic de la FVR. Celles
que l'on peut utiliser facilement au Niger sont la fixatior.
du complément et l 'immunofluorescencp 0
La surveillance sérologique et clinique s'adressera
à toutes les espèces sensi~l~s, dans toutes les régions et
sera renforcée aux frontières.
Elle permettra ainsi
de suivre l'évolution de 19in-
cidence deâ maladies abortives en général et de la FVR en
particulier.
Cependant, une autre mesure sanitaire peut être
appliquée: c'est la lutte contre les vecteurs.
II.1.2 - La lutte contre les vecteurs
La mise en oeuvre de la lutte anti-vectorielle sera
justifiée lors d'une activité importante des insectes surtout
lorsque cette dernière sera associée à des cas d'avortements.
Mais pour qU3 cette lutte soit efficace, il faut connaître
les insectes vecteurs potentiels.
Parmi les insectes cités dans l'épidémiologie de la
FVR, ceux qu'on peut rencontrer au NIGER sont les Anophèles
et les Culex car ils ont une large répartition en Afrique
tropicale.
Les Aedès qui exigent une forte humidité pourraient
se localiser dans les zones de barrage.
Cependant il n'est pas exclu que diautres arthropodes qui ne
figurent pas sur la liste des vecteurs rencontrés dans lès
autres pays soient des agents de transmission.
C'est pourquoi, il est nécessaire de mener une enquête entomo-
logique. Il s'agit de collecter les populations d'arthropodes,
de les identifier et d'essayer d'en isoler le virus.

- 89 -
De même, il faut étudier leur mode de repos~ leur
gtte de reproduction et leur sensibilité aux insecticides.
La lutte contre les insectes se fera de préférence
dans les zones écologiquement favorables à leur
mult~plica.
tion
: c g est-à-dire à proximité des marécages~ des étangs~
des retenues d'eau naturelles ou artificielles~ les habitationso
Cette lutte~ mêmz si elle ne permet pas la suppression totale
des vecteurs~ peut réduire de manière significative leur acti-
vité et donc diminuer les charces de transmission.
A cette prophylaxie sanitaire on peut associer la
prophylaxie médicale basée sur la vaccination.
II.2 - PROPHYLAXIE MEDICALE
Son obj€ctif
sera de renforcer les moyens naturels
de résistance des organismes sensibleso
La prophylaxie médicale reposera sur l'utilisation des vaccinso
Comme nous l'avons souligné dans les méthodes géné-
rales de lutte~ deux types de vaccins sont disponibleso Il
s'agit du vaccin vivant atténué et des vaccins inactivés ou
tuéso
Il serait dangereux d'utiliser un vaccin vivant
atténué d 9 autant plus que l'incidence de la FVR est faibleo
Ce vaccin nécessite en outre un certain nombre de précautions
d g emploi car il provoque des anomalies foetales chez les _.
femelles gestantes.
Par conséquent, il est difficile de lYutiliser
en élevage traditionnel où les saillies et les mises bas se
font au hasardo
Cela se justifierait si on adoptait un plan de syn-
chronisation des chaleurs avec des mises bas groupéeso

- 90 -
Tant que le virus ne sera
pas isolé au NIGER~ il
nVest pas prudent dVopter pour l'utilisation de ce vaccino
CVest pourquoi~ si la vaccination s'avèrait
néces-
saire dans
l'avenir à la suite d'une incidence importante de
la maladie~ IVemploi du vaccin inactivé serait souhaité 0
Mais avant dYenvisager la mise en oeuvre de cette
prophylaxies il faut tenir compte de IVincidence de la maladie~
de son coût
et du coût de la ?rophylaxie.
Nous retiendrons pour l'heure que la lutte contre
la FVR doit~ pour être rentable
entrer dans le cadre global
J
de lutte contre les affections abortives du bétail.
Ainsi les mesures à prendre sont les suivantes
La recherche des anticorps anti FVR sur des animaux prove-
nant de pays infectés ou plus globalement associer la recher-
che des anticorps anti FVR à ceux des principales affections
abortives du bétail.
- Le sondage sérologique lors des campagnes traditionnelles
de prophylaxie afin de reconstituer un tableau épidémiolo-
gique complet c'est-à-dire de tenir à jour la carte de ré-
partition de IVaffection.
- Le dépistage clinique en élevage moderne.
- La vaccination en région frontalière directement menacée ou
mieux lorsque la prophylaxie sVavère nécessaire contre l'une
ou IVautre cause abortive~ monter une lutte concertée (vac-
cination polyvalente ou associée) contre la plupart de ces
entités pathologiques 0

- 91 -
CONCLUSIONS
GENERALES
-----------------------

- 92 -
La fièvre de la vallée du Rift est une arbovirose
commune à l'homme et aux animaux domestiques (ovins~ caprins 3
bovins).
C'est une anthropozoonose.
Lorsqu'elle apparait sous sa forme épizootique~ elle
engendre de lourdes pertes dans les élevages 3 en particulier
celui des petits ruminants.
Ces pertes sont la conséquence dVune forte mortali-
té chez les jeunes et des avortements chez les femelles ges-
tantes.
L'homme contracte facilement la maladie.
Signalée pour la première fois au Kenya dans la vallée du
Rift~ (d'où son nom)3 elle s'est propagée dans l'Est 3 le Cen~
tre et le Sud de l'Afrique.
Récemment 3 elle a fait une incursion en Egypte et
s'est révélée comme une conséquence du barrage d'Assouan.
Elle a aussi été re~rouvée en Afrique Occidentale notamment
au Nigéria.
Cette affection tend donc petit à petit à envahir
tout le Continent et a en menacer d'autres.
Ces évènements ont conduit les autorités nationales et inter-
nationales à une prise de conscience sur l'importance de la
FVR.
Ainsi 3 pour savoir ce qu'il en est au NIGER; nous
avons jugé nécessaire de mener une enquête sérologique.
Notre inquiétude est
rendue
légitime par l'impor-
tance de l'élevage dans l'économie du NIGER et par la situa-
tion géographique de notre pays par rapport à ceux où la pré-
valence de la maladie est
sinon préoccupante, du moins assez
élevée.

- 93 ~
En effet~ l'élevage est la deuxième activité économi-
que après l'agriculture. En plus~ des études ont montré une
circulation du virus au Tchad et au Nigéria~ pays limitrophes
du Niger.
De Janvier à Février~ ~~us avons récolté 1 200 sérums
de petits ruminants du cheptel nigérien à travers les sept
dép~rtements.
Ces sérums ont été soumis à la réaction diimmuno~
fluorescence indirecte.
Les résultats obtenus sont les suivants
- Une sérologie positive globale de 2~8 p. 100 pour llensemble
des régions prospectées.
- Ce taux varie avec
les régions et il est plus élevé à Zlnder
avec 6~2 p. 100.
L'infection à FVR existe donc au NIGER
mais la
j
circulation du virus est faible. Sans doute est-elle influen-
cée par les années de sécheresse qu'a connu le Sahel en général
et le Niger en particulier.
Les observations ont montré que les poussées épizoo-
tiques apparaissent fréquemment à la suite des périodes de
pluies d'une violence insolite favorables à la pullulation des
insectes vecteurs.
Dans le cas particulier de Zinder le taux élevé
pourrait s'expliquer par un débordement du virus à partir
d'un foyer nigérian.
Ces résultats faibles d'une façon globale
doivent
j
cependant attirer l'attention des vétérinaires car il n'est pas
exclu qu'une épizootie s'installe lorsque les conditions seront
favorables au développement et à la transmission du virus.

- 94 -
D~autre part~ la FVR actuellement méconnue risque
de devenir une pathologie importante dans liavenir avec l'in-
tensification de l'élevage donc avec une m~ill~ure surveillan-
ce des troupeaux. Il conviendra donc de mettre en oeuvre des
mesures de prévention.
Nous retiendrons pour l~heure que la lutte contre
la FVR au NIGER; doit~ pour être rentable~ entrer dans le
cadre global de lutte contre les affections abortives du
bétail.
Ainsi les mesures doivent concerner
- La recherche des anticorps anti FVR sur des animaux prove-
nant de pays infectés ou plus globaJement associer la recher-
che des anticorps anti virus FVR à ceux des principales
affections
abortives du bétail.
- Le sondage sérologique lors des campagnes traditionnelles
de prophylaxie afin de reconstituer un tableau épidémiolo-
gique cornplet et prévenir la contamination humaine.
- La vaccination en région frontalière directement menacée.
~ On pourrait associer lors d'activité intense des insectes
vecteurs~ une lutte contre ces derniers.
Ces mesures de prévention nécessitent la collabora~
tion entre médecins~ vétérinaires et entomologistes.
Au terme de ce travail~ nous pensons que le Labora~
toire Central d~Elevage devrait se doter des moyens techniques
permettant le diagnostic de la FVR.
En outre~ il est nécessaire de procéder à des enquê-
tes sérologiques dans les autres pays de l'Afrique Occidontale.

- 95 -
B 1 B LlO G ~ A PHI E
-------------------------------------
------------------------------------~

- 96 -
1.
ALEXANDER (R.A).
Rift Valley Fever in the union.
J.S. Afr. Veto Ass.~ 1951~ 22~ 105-109.
2.
ANONYME
An Rep. Veto Div. Minsitry of Animal
Health and
Forestry Northern Nigeria. 1958/1959.
3.
ANONYME
La Fièvre de la Vallée du Rift.
Office International 1e3 Epizooties (OIE) 1981~
Série technique nO 1.
4.
ANONYME
La Fièvre de la Vallée du Rift : Un problème naissant
pour l'homme et l'animal.
OMS, 1982, Publication OFFSET N° 63.
5.
ANONYME
Rapport annuel du service de l'Elevage et des Industries
animales.
Ministère des Ressources animales (1986), Rép. du NIGER.
6.
ARY (T.I.)
Contribution à l'Etude de l'élevage ovin au Niger
Etat actuel et proposition d'amélioration.
Thèse Doct. Veto Dakar, 1975, nO 13.
7.
BROOM (J.G.) et FINDLAY (G.M.)
Complément fixation test in Rift Valley fever.
Lancet, 1932, 222~ 609-611.
8.
BROWN (R.D.), SCOTT (G.R.) et DALLING (T.)
Persistance of antibodies to Rift Valley Fever in man.
Lancet, 1957~ 273, 345.

- 97 -
9.
COACKLEY (w.)
The effect of rcccntly isolated strains of Rift Valley
Fever virus on lamb testis cells.
J. Path. Bact.~ 1963~ ~~ 530-532.
10.
COACKLEY (W.)
Alteration in virulence of Rift Valley fever virus
during passage in lambs testis cells.
J. Path. Bact., 1965~ 89~ 123-131.
Il •. CURASSON (G.)
nLa fièvre de la vallée du Rift existe-t-elle au Soudan
français li ?
Bull. Soc. Path. Exot., 1934, ~, 599-602.
12.
DAUBNEY (R.), HUDSON (J.R.)
Enzootic hepatitis in Rift Valley Fever:
An undescribed
virus disease of sheep, cattle and man from East Africa
with anaccount of an experimental inoculation of man by
Garnham (P.C.).
J. Path., 1931, 34, 545-579.
13.
DONAINT (P.) et LANCRENON (F.)
Le NIGER: collection li Que sais-j e (1 ?
Presses Universitaires de France, 3e Edition 1984.
14.
EASTERDAY (B.C.)
Experirœntal Rift Valley Fever
Ph D. Thesis. University
of Wisconsin. Madison~ 1961.
15.
EASTERDAY (B.C.)~ MC GRAVAN (M.H.)~ ROONEY (J.R.) et
MURPHY (L.C.)
The Pathogenesis of Rift Valley fever in Lambs.
Am. J. Veto Res.~ 1962~ ~~ 470-479.

- 98 -
16.
EASTERDAY (B.C.)~ MURPHY (L.t.)~ BENNETT (D.G.)
Experimental Rift vall~~ fever in calves~ goats and
pigs.
Am. J. Veto Res.~ 1962 (a), ~~ 1224-1230.
17.
EASTERDAY (B.C.)~ MURPHY (L.C.) et BENNETT (D.G.)
~r~ntal Rift valley fever in lambs and sheep.
Am. J. Veto Res.~ 1962 (b)~ ~, 1231-1240.
18.
EAS~ERDAY (B.C.)~ MYRPHY (L.G.)
The growth of Rift Valley fever virus in cultures of
establ1shed lines of cells.
Cornell Vet.~ 1963~ 21~ 3 ~ Il.
19.
EISA (M.)~ OBEID (HMA) and EL SAWI (A.S.A.)
Rift valley fever in the Sudan (1). Results of field
investigations of the first epizootic in Kosti District.
Bull. Anim. Hlth. Prod.~ Afr.~ 1977~ E2~ 343.
20.
EISA (M.) and OBEID (H.M.A.)
Rift valley fever in the Sudan (II). Isolation and
Identification of the virus from a recent Epizootie in
Kosti District.
Bull. Anim. Hlth. Prod. Afr.~ 1977~ 25
349.
3
21.
EISA (M.)1 KHEIR EL SID (E.D.)~ SHOMEIN (A.M.) and
MEEGAN (J.M.)
An outbreak of Rift Valley Fever in Sudan (1976).
Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg.~ 1980~ ~~ 417.
22.
FAGBAMI (A.H.)~ TOMORI (
) and KEMP (G.E.)
A survey of Nigerian domestic and Wild animaIs for
neutralizing antibody to indigenous Rift Valley fever
virus.
Nig. Veto J.~ 1973~ ~~ 45.

- 99 -
23.
FERGUSON (W.)
Identification of Rift valley fever in Nigeria.
Bull. Epiz. Dis. Afr.~ 1959~ l~ 317-318.
24.
FINDLAY (G.M.)~ STEPHANOPOULO (G.J.) and MAC COLLUM (F.O.)
Présence d'anticorps contre la fièvre de la vallée du
Rift dans le sang des Africains.
Bull. Soc. Path. Exot.~ 1936~ 29~ 986.
25.
GONZALEZ (P.J.), MC CORMICK (J.B.)~ SALUZZO (J.F.) et
GEORGES (A.J.)
Les fièvres hémorragiques africaines d'origine virale
Contribution à leur étude en République Centrafricaine.
Cah. ORSTOM. Ser. Ent. Med. et Parasitol.~ 1983~ 21~
119-130.
26.
HENDERSON (B.E.)~ MC CRAE (A.W.R.)~ KIRYA (B.G.)~
SGENKUBUGE (Y.) and SEMPALA (S.D~K)
Arbovirus epizootics involving man~ mosquitoes and
vertebrates at Lunyo Uganda (1968).
Am. Trop. Med. Parasitol.~
1972~ 66~ 343.
27.
IWASA (S.)
Multiplication of RVF virus in human liver cell culture
with special reference to production of complement
fixing antigen.
Jap. J. Exp. Med.~ 1959~ 29~ 323.
28.
JOUVERT (J.D.S.)~ FERGUSON (A.L.) et GEAR (J.)
Rift valley fever in south Africa : The occurence of
human cases ln the Orange Free State.
S. Af. Med. J.~ 1951~ 25~ 890-891.
29.
KOKERNOT (R.R.)~ CASACA (V.M.R.), WEINBREN (M.P.) and
Mc. Intosh (B.M.)
Survey for antibodies against arthropod - borne viruses
in the sera of indegenous residents of Angola.
Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg.~ 1965~ 59~ 563.

- 100 -
30.
LANGLIN (L.W.), MEEGAN (J.M.), STRAUSBAUGH (1.J.), MORENS (D.M)
and WATTEN (R.H.)
Epidemic Rift valley fever in Egypt : observation of
the spectrum of human il1ness.
Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg. , 11, 630.
31.
MACKENZIE (R.D.)
The cultivation of the virus of Rift valley fever.
J. Path. und Bact., 1933) lI, 75_79.
32.
MACKENZIE (R.D.), FIND1AY (G.M.)
The production of a neurotropic strain of Rift valley
fever virus.
1ancet 1936, 230, 140.
33.
MAHAMAN (D.)
Contribution à l'Etude de la Pathologie du dromadaire
au NIGER.
Thèse doct. Vet., Dakar, 1979, nO 14.
34.
MARNIQUET (D.)
Etude Comparée de trois arboviroses ovines transmissi-
bles à l'homme
la fièvre de la vallée du Rift
la Maladie de Wesselsbron
et
la Maladie de Middelburg
Thèse Doct. Veto Alfort, 1972, nO 73.
35.
MATUMOTO (M.), NISHI (1.) et SABURI (Y.)
Multiplication de la souche neurotrope du virus de la .
Fièvre de la vallée du Rift dans la rate et le foie de
la souris.
Comp. Rend. Soc. Biol., 1958, 152, 1623.
36.
MATUMOTO (M.), SABURI (Y.), NISHI (1.)
Rift valley fever virus in the one day old chick embryo.
J. Immunol., 1959, 82, 219-225.

- 101 -
37.
MAURICE (Y.) and PROVOST (A.)
Sondages sérologiques sur les arboviroses animales en
Afrique Centrale.
Rev. Elev. Med. Veto Pays Tropicaux~ 1969, 22, 179.
38.
MAYANA (S.)
La sécheresse au NIGER en 1972-73 et la reconstitution
du cheptel.
Thèse Doct. Vet.~ DAKAR~ 1978, nO 2.
39.
MEEGAN (J.M.)
The Rift valley fever epizootic in Egypt at 1977-78.
Description of the epizootic and virogical studies.
Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg.~ 1975, 1l~ 618.
40.
MIMS (C.A.)
Rift Valley fever virus in mice
: General featurc
of
the infection.
Brit. J. Exp. Path.~ 1956~ 1I~ 99-109.
41.
MUNDEL (B.) et GEAR (J.)
Rift valley fever : the occurence of human cases on
Johannesburg.
S.A. Med. J. 1951~ 25~ 797-800.
42.
PELLISSIER (A.) et ROUSSELOT (R.)
Enquête sérologique sur IWincidence des virus neurotro-
pes chez quelques singes de l'Afrique équatoriale
Française.
Bull. Soc. Path. Exot.~ 1954, 47, 228-231.
43.
PINI (A.)~ LUND (L.J.) and DAVIES (F.G.)
Detection of Rift Valley fever virus by the fluorescent
antibody technique in organs of experimentally infected
animaIs.
Research in Veterinary
Science~ 1970~ 11~ 82-85.

- 102 -
44.
PROVOST (A.)
~Une zoonose menaçante : la fièvre de la vallée du
Rift~.
Rev. Elev. Med. Veto Pays Tropicaux
1980
j
j
l l j
11-14.
45.
RANDALL (R.)j GIBBS (L.N.)j AULISIO (C.G.) and BINN (L.M.)
Development of a formalinized Rift valley fever vaccine.
Fed. Proc. j 1960 j 19) 219.
46.
SADDINGTON (R.S.)
In vitro and in vivo cultivation of the virus of Rift
valley fever.
Proc. Soc. Exp. Biol. Med.
1934
j
j
l l j
693-694.
47.
SALEY (H.)
Contribution à liEtude des Brucelloses au NIGER:
Résultats diune enquête sérologique dans trois dépar-
tements.
Thèse Doct. Vet. s Dakar
1983
nO 6.
j
j
48.
SHONE (D.Ko)
Rift valley Fever in Southern
Rhodesia
Cent
j
Afro Jo MED. j 1958 j ij 284.
49.
SIDIKOU (H.A.) et CHAMARD (D.C.)
Géographie du NIGER.
Les Nouvelles Editions Africaines
Dakar) 1976.
j
50.
SMITHBURN (K.C.)j HADDOW (A.J.) et GILLERT (J.D.)
Rift valley fever : isolation of the virus from wild
mosquitoes.
Brit. J. Exp. Path.
1948
j
s
~j 107-121.

- 103 -
51.
TAKAMORI (N.), NAKANO (H.), HEMNI (M.), KITAOKA (M.)
Propagation of Rift valley fever virus in Ascites Hepa-
toma ce Ils of the rat. Production of a new variant of
the virus.
Virology Baltimore, 1955
l, 58-83.
52.
VALADAO (F.C.),
Nota previa sobre a c,~orrencia de uma nova, doenca em
Mocambique, a febre do vale de Rift.
Veto Mocamb., 1969, ~, 13.
53.
VAN DER LINDE (N.T.)
A recent Epidemie of Rift Valley fever in the Orange
free state.
J.S. Afr. Veto Ass., 1953, 24, 145-148.
54.
and active
55.
WILLIAMS (M.C.), WOODWAL (J.P.), KNIGHT (E.K.), GORBE (P.A.)
and HADDOW (A.J.)
An outbreak of Rift valley fever occuring near Entebbe
An Rep. East. African Virus Research Institute

Entebbe
Rpt. nO la, 1959160.

SERMENT DES VETERINAIRES DIPLOMES DE DAKAR
, _ , _ , _ r _ , _ ' _ ' _ ' _
Il F..idète.me.nt
atta.c.hé. aux. dÜc.e.c.t..ive..6 de. Ctaude.
BOURGELAT,
6ondate.u~ de. f'En.6e...igne.me.nt vété.~..ina..i~e. dan.6 te.
monde., je. p~ome.t.6 e.t je. ju~e. de.vant me..6 ma~t~e..6 e.t me..6 a~né.6
D'avo..i~ e.n toU.6 mome.nt.6 e.t e.n tou.6 t..ie.ux te. .6ouc...i
de. ta d..ign..ité e.t de. t'honne.u~ de. ta p~o~e..6.6..ion
vété~..ina..i~e..
- D'ob.6e.~ve.~ e.n toute..6 c...i~c.on.6tanc.e..6 te..6 p~..inc...ipe..6
de. c.o~~e.c.tion e.t de. d~o..itu~e. 6..ixé..6 pa~ te. c.ode.
déontotog..ique. de. mon pay.6.
- De. p~ouve.~ pa~ ma c.ondu..ite., ma c.onv..ic.tion, que. ta
6o~tune. c.on.6..i.6te. mo..in.6 dan.6 te. b..ie.n que. t'on a,
que. dan.6 c.e.tu..i que. t'on pe.ut 6a..i~e..
De. ne. po..int me.tt~e. à t~op haut p~x te. .6avo..i~
que. je. do..i.6 a ta géné.~o.6..ité de. ma pat~..ie. e.t a
ta .6ott..ic...itude. de. tou.6 c.e.ux qu..i m'ont pe.~m..i.6 de.
~éat..i.6e.~ ma voc.at..ion.
QUE TOUTE CONFIANCE ME SOIT RETIREE S'IL ADVIENNE QUE
JE ME PARJURE"

vu
LE CANDIDAT
LE DIRECTEUR
DE L'ECOLE INTFR-ETATS
LE PROFf.SSEUR RESPONSABLE
DES SCIENCES ET MEDECINES
DE L'FCOLE INTER-ETATS DES SCIENCES
VETERINAIRFS
ET MEDECINE VETERINAIRES
vu
LE DOYEN
LE PRESIDENT DU JURY
DE LA FACULTE DE MEDECINE
ET DE PHARI.'IACIr
VU YT p::R~n:; D' IMPRnŒR
DAKAR, LI
~ LE RECTEUR PRESIDfNT DU CONSEIL PROVISOIHF DE L'UNIVERSITE DF DAKAR.