Sciences et Médecine
Criblage variétal du riz pour la résistance.
au RYMV au Sahel
M. M'B. COULIBALY', G. KONATE2 et J. D. ZONGO'
1. Institut d'économie rurale - Centre de recherches agronomiques de Niono BP. 07 Ségou - Mali.
2. Institut de l'environnement et de recherches agricoles 01 B.P. 476 Ouagadougou 01 - Burkina Faso.
3. Université - FAST - 03 B.P. 7121 Ouagadougou 03 - Burkina Faso.
Introduction
nées s'échelonnent de 25 à 80 % suivant la date d'in-
fection et la sensibilité des cultivars. Malheureusement,
Décritpourlapremièr.efoisen1970au~enyaen iln'existepaspourl'instantdeméthodedecontrôlede
Afrique de l'Est (BAKKER, 1970), le VIrUS de la
la maladie. Sur le plan génétique, la sélection des
panachure jaune du riz ou Rice Yellow Mottle
lignées ayant un bon niveau de résistance et un ren-
Virus (RYMV) a été observé en 1975 au Niger et en
dement élevé a abouti jusque-là, à des résultats peu
Sierra Léone, (ATrERE et al., 1983), en 1976 en Côte
satisfaisants. Toutes les variétés dites tolérantes,
d'Ivoire (FAUQUET et THOUVENEI, 1977) et en 1978
développées par le Programme conjoint d'amélioration
en Guinée (FAUQUET et THOUVENEL, 1978). Le
variétale de l'Association pour le développement de la
RYMV est un Sobernovirus transmis par différentes
riziculture en Afrique de l'Ouest (ADRAO) et l'Institut
espèces de coléoptères (chrysomelidae spp), (HULL,
international d'agriculture tropicale (liTA) (ADRAO,
1988). La maladie est aujourd'hui répandue sur l'en-
1995), ont manifesté des niveaux de sensibilité très
semble du continent africain. En Afrique de l'Ouest, la
variables dans les tests de comportement variétal au
maladie est particulièrement importante. Des cas
RYMV à travers les différents environnements rizi-
d'épidémies dévastatrices ont été rapportés en rizicul-
coles ouest-africains notamment au Mali (ANONYME,
ture irriguée intensive au Mali. Ceux-ci peuvent avoir
1995).
des dimensions variables. Selon les environnements,
l'incidence de la maladie atteint 80 % à Sélingué et à
Les travaux décrits ici avaient pour objectifs l'identifi-
l'Office du Niger au Mali, 75 % au Niger (RECKHAUS
cation de sources de résistance au RYMV chez le riz
et ADAMOU, 1989) et 51-87 % à Madagascar
qui tiennent compte de la biodiversité du virus dans la
(ANONYME, 1991). Les pertes de récolte occasion-
zone soudano-sahélienne.
Matériels et méthodes
Inoculation du RYMV
Matériel biologique
Un gramme de feuille de la variété sensible de riz
BG 90-2 infecté par les pathogroupes A ou B du
Deux cent soixante dix variétés de riz provenant des col-
RYMV ont été broyées dans 10 ml de tampon phos-
lections variétales du Burkina Faso et du Mali et consti-
phate 0, 05 M pH 7,0 à l'aide d'un mortier et d'un pilon
tuées de variétés locales d'espèces traditionnelles de riz
stériles. Le broyât obtenu a été filtré sur une couche
africain de Oryza glaberrima et d'espèces introduites
de gaze et 2 g de Carborundum 600 mesh ont été
de Oryza saliva. ont été évaluées pour leur sensibilité
additionnés à 100 ml de filtrat.
au RYMV
Les deux pathogroupes A et B du RYMV ont été
Isolats viraux
inoculés mécaniquement à 6480 jeunes plants de
riz (12 plants/variété/pathogroupe) âgés de 28 à
Les pathogroupes A et B du RYMV (KONATÉ et al.,
30 jours.
1997) originaires du Burkina et du Mali ont été uti-
lisés pour infecter les variétés de riz.
Rev. CAMES - Série A, vol. 01, 1999
7
Sciences et Médecine
Dispositif expérimental
Des prélèvements d'échantillons ont été réalisés sur les
feuilles émergeantes à 12, 25 et 50 jours après inocu-
Le test de criblage a été conduit au champ en simples
lation pour évaluer la teneur en virus de ces organes à
parcelles d'observations pendant la saison sèche chaude
l'aide d'un procédé biotine/streptavidineIDAS-ELISA.
de février à mai 1997 et la saison humide de la même
Pour cela, une courbe étalon établie à partir de RYMV
année de juin à novembre au Burkina Faso ainsi qu'il
purifié et remis en suspension dans un extrait brut de
suit: chaque variété a été semée sur trois lignes de
feuille de riz sain a été utilisé. Les concentrations en par-
4 m de long avec des espacements de 0,30 m x 0,30 m
ticules virales variaient de 0-200 ng/ml.
sur la ligne et entre les lignes et 0,50 m entre les variétés.
La ligne centrale a servi de témoin de contrôle. Un déma-
Nous nous sommes inspirés également du système
riage à un plant a été réalisé 15 jours après la levée. Une
d'évaluation de la résistance du riz au RYMV utilisé
fertilisation minérale sous forme d'engrais N-P-K (15-
à l'lITA (Institut international d'agriculture tropicale)
15-15) à 100 kg/ha et d'urée (46 % N) à 200 kg/ha ainsi
(tableau 1).
qu'une fertilisation organique sous forme de fumier
de parc à 5 t/ha ont été appliquées. L'engrais NPK
Résultats
(15-15-15) et le fumier ont été apportés comme engrais
de fond au semis. L'urée a été appliquée en deux frac-
L'infection du riz par le RYMV a eu un effet dépressif sur
tions au tallage et à l'initiation paniculaire.
la plupart des caractères agromorphologiques. Cet effet
a permis de distinguer quatre groupes de variétés (tableau
Critères d'évaluation de la résistance
lIa et b). Le groupe 1, constitué d'une seule variété de
au RYMV
Oryza glaberrima, n'a été infecté par aucun des deux patho-
groupes du RYMV. Chez le groupe 2, constitué de neuf
L'évaluation de la résistance au champ était basée sur la
comparaison de la coloration foliaire, du développement
variétés appartenant toutes à l'espèce Oryza glaberrima,
végétatif, de la durée du cycle semis - épiaison, des com-
l'infection n'a pas eu d'effet sur les caractères agromor-
posantes de rendement des plants inoculés et non ino-
phologiques. Chez le groupe 3, constitué de trois variétés
culés et de l'accumulation du RYMV dans les feuilles.
appartenant à l'espèce Oryza sativa L., l'infection n'a
eu qu'un effet faible sur ces caractères. Par contre, chez
Pour chaque variété, les observations ont été réalisées
les 257 autres variétés constituant le groupe 4, les carac-
de manière individuelle sur 10 plantes médianes de la ligne
tères agromorphologiques ont été affectés de façon impor-
inoculée et 10 plantes médianes de la ligne non inoculée.
. tante par l'infection. Le caractère agromorphologique le
Les caractères mesurés sur chacune des 10 plantes
plus affecté était le poids récolte (60-90 %) résultant d'une
étaient: la hauteur 25 jours après inoculation et à la matu-
stérilité élevée des épillets (50-80 %) tandis que les moins
rité (Hm), le nombre de talles 25 jours après inocula-
affectés étaient le nombre de talles, le poids de 1000 grains
tion (Tl), le nombre de talles fertiles (Tm), le nombre
et le nombre de grains par panicule. Le nombre de talles
de grains pleins, le nombre de grains vides et le poids
et la hauteur des plants à 25 jours après inoculation du
récolte (PR). Trois paramètres ont été calculés au niveau
virus, la hauteur des plants à la maturité et le cycle semis-
individuel à partir des données collectées. TI s'agissait: du
épiaison ont été moyennement affectés par l'infection. Les
cycle semis-épiaison (CSE), semis-maturité (CSM),
variétés de ce dernier groupe appartenaient aux espèces
du nombre de grains par panicule selon la formule
Oryza glaberrima et Oryza sativa. Parmi elles, des variétés
NGPa =[(NGP + NGV)ffm] et du taux de stérilité selon
la formule TS = [100 x (NGV)/(NGP + NGV)] % où
comme Wita 7, Wita 8, Wita 9 et Metica étaient consi-
NGPa =nombre de grain par panicule, NGP =nombre de
dérées comme tolérantes/résistantes et proposées à la vul-
grains pleins, NGV =nombre de grains vides, Tm =nombre
garisation (ANONYMES, 1994, 1995).
de talles fertiles et TS =taux de stérilité. Les effets de l' in-
L'estimation de la teneur en virus des feuilles de riz chez
fection du RYMV ont été mesurés pour chaque variété
. 28 variétés choisies parmi les 270 variétés testées est
étudiée et sur chacun des caractères observés à partir de
rapportée dans le tableau m. Les variétés se sont distin-
la moyenne des performances des 10 plantes inoculées
guées les unes des autres par la précocité de l'infection, la
exprimées en pourcentage de la moyenne des 10 plantes
quantité de particules virales accumulées et la réaction
saines de la ligne témoin en utilisant la formule sui-
différentielle vis-à-vis des deux pathogroupes du RYMV.
vante:
Le RYMV a été détecté en grande quantité (30-225 mg/g
1 (effets de l'infection) = [100 x (mt - mi)/mt)]} %
de feuille) dès le 12e jour après inoculation chez 15 variétés.
où mt =moyenne de 10 plants sains et mi =moyenne
Le pathogroupe A seul a infecté 9/15 variétés, le patho-
de 10 plants infectés.
groupe B 1115 et les deux pathogroupes 5115. Chez huit
8
Rev. CAMES - Série A, vol. 01,1999
Sciences et Médecine
variétés, les pathogroupes A et B du virus ont été détectés
sibilité dans les tests de comportement variétal au Mali.
simultanément 25 jours après inoculation. Chez quatre
Dans nos conditions expérimentales la variété Metica
variétés, le virus a été détecté seulement 50 jours après
est sensible. La sensibilité de ces variétés semble être
inoculation alors qu'il n'a pas pu l'être chez une variété.
due probablement à la différence de variabilité biolo-
gique qui existe entre les souches utilisées et nos deux
Les 257 variétés ayant le même niveau de sensibilité
pathogroupes.
se sont distinguées par' des symptômes caractérisés par
de la panachure chlorotique chez les espèces de Oryza
Lorsqu'on se réfère au système d'évaluation de la résis-
sativa et des brunissements avec de nombreuses lésions
tance du riz au RYMV de l'IITA qui est limité au stade
nécrotiques chez les espèces de Oryza glaberrima. Sept
épaisonlfloraison, les notes 5, 7 et 9 correspondent
variétés ont réagi différemment à l'infection des deux
respectivement à modérément résistant, sensible et hau-
pathogroupes en exprimant des symptômes variant de
tement sensible. Dans nos conditions expérimentales,
faible à moyen. Il n'a pas été possible d'établir une rela-
les variétés auxquelles ces notes sont affectées peu-
tion entre l'expression des symptômes et l'accumula-
vent être rassemblées en un seul groupe réduisant ainsi
tion du virus dans les plants de riz. Ainsi, par exemple,
l'échelle à 4 groupes de résistance : (0) ; variétés
les variétés TOG 5681 et TOG 5674 qui n'ont pas mani-
immunes, (1) ; variétés résistantes chez lesquelles les
festé de symptômes contenaient jusqu'à 25-55 p,g/g
caractères agromorphologiques ne sont pas affectés
de feuille de RYMV 50 jours après infection. Cependant,
par l'infection et les teneurs en virus sont faibles, (3) ;
les symptômes forts étaient toujours accompagnés d'une
variétés tolérantes chez lesquelles les caractères agro-
forte accumulation de particules virales.
morphologiques sont faiblement affectés et les teneurs
en virus sont relativement élevées, (5) ; variétés sen-
Discussions
sibles chez lesquelles les caractères agromorphologiques
sont fortement affectés et les teneurs en virus sont
Les variétés de riz identifiées comme résistantes au cours
élevées.
de nos travaux appartiennent toutes à l'espèce afri-
caine Oryza glaberrima. Celles identifiées comme tolé-
Parmi les variétés testées, une seule a été immune à l'in-
rantes appartiennent à l'espèce Oryza sativa L. du type
fection des deux pathogroupes en l'occurrence TOG
japonica, utilisées en riziculture pluviale en Afrique
5672. Ce résultat est en contradiction avec celui rapporté
depuis des siècles. Quant aux variétés sensibles, elles
sur l'immunité de TOG 7235 par THOTTAPPILLY
appartiennent à l'espèce Oryza sativa L. du type indica
(1993). Alors que dans nos conditions expérimentales
introduite en Afrique récemment à la faveur du déve-
cette variété a été trouvée résistante. La contradiction
loppement des ouvrages hydroagricoles pour l'irriga-
résulte probablement de la variabilité de la souche virale
tion et à l'espèce Oryza glaberrima.
utilisée qui pourrait être différente des deux pathogroupes
sahéliens du RYMV. Les variétés TOG 5681 et TOG
Le RYMV est confiné au continent africain. La résis-
5674 qui sont pourtant infectées et ne présentent pas de
tance/tolérance pourrait être le résultat de la longue
symptômes constituent des hôtes dangereux, car eUes
coévolution du virus et des variétés traditionnelles afri-
contribuent à l'augmentation de l'inoculum naturel.
caines de riz ; il en est de même pour les variétés de
Oryzasativa L. du type japonica pluvial cultivées depuis
Le poids récolte est le plus affecté à cause du taux de
des siècles en Afrique. Nos résultats sur la résistance au
stérilité élevé des épillets Cela montre qu'une bonne
RYMV de Oryza glaberrima corroborent avec ceux rap-
sélection de variétés résistantes ou tolérantes au RYMV
portés par plusieurs auteurs (ANONYME, 1996 ;
ne peut pas se limiter à l'évaluation de la sévérité des
ATTENE et al., 1983; FOMBA, 1988; JOHN et al.,
. symptômes.
1987; THOTIAPPILLY et al.,1993 ; lITA, 1986).
Le niveau de résistance de Moroberekan et lRAT 104
Conclusion
que nous avons observés est similaire à celui rapporté
La résistance variétale basée sur la quantification des
par AWODERU (1991), OKIAMA et SARKARUNG·
effets de l'infection sur les caractères agromorpholo-
(1983). La variété FKR 33 est rapportée pour la première
giques semble être un phénomène à caractère statique
fois comme étant une bonne source de résistance aux
qui est acquis dès les premiers stades de végétation chez
deux pathogroupes sahéliens du RYMV.
les variétés résistantes rencontrées exclusivement chez
Nos résultats confirment la sensibilité des variétés Wita
les Oryza glaberrima. Par contre, chez les variétés
qui avaient déjà manifesté des niveaux différents de sen-
tolérantes composées en majorité d'espèces Oryza
Rev. CAMES - Série A, vol. 01, 1999
9
Sciences et Médecine
sativa ; celle-ci évolue graduellement avec l'âge des
ATTERE A., FATOKUN C. A., 1983. Réaction of Oryza gla-
plants de riz. Le seuil de tolérance admissible pour ces
berrima accessions 10 rice yellow moule virus. Plant Disease, 67,
420-421, Il.
variétés est comprise entre 0-10 %.
AWODERU V. A., 1991. Rice yellow moule virus in West Africa.
Il ressort des résultats de cette étude que l'évaluation de
Tropical. Pest Management, 37 (4), 356-362.
la résistance réalisée seulement au stade de dévelop-
BAKKER W., 1970. Rice yellow moule virus, a mechanically
pement végétatif semble insuffisante pour mieux carac-
transmissible virus disease of rice in Kenya. Netherlands. Journal
tériser la résistance variétale au RYMV L'incidence
of. Plant Pathology, 76(2), 53-63.
du virus étant plus marquée au stade maturité sur les
FAUQUET c., THOUVENEL J. C., 1977. Isolation of rice yel-
composantes du rendement notamment le taux de ~té
low mottle virus in Ivory Coast. Plant Disease. Reporter, 61 (6),
ri li té des épillets entraîne une baisse sensible de la pro-
443-446.
duction.
FAUQUET c., THOUVENEL J. c., 1978. Identification of rice
Tout progrès génétique dans l'amélioration variétale
yellow moule virus in Ivory Coast. London, UK ; Academie Press:
de la résistance au RYMV passe forcément par une
307-310.
connaissance approfondie de la variabilité biologique
FOMBA S. N., 1988. Screening for seedling resistance to rice yel-
du virus à travers les différentes écologies rizicoles.
low rnottle virus in sorne rice cultivars in Sierra Leone. Plant
Celle-ci conditionne sans doute le succès attendu pour
Disease, 72, 641-642.
l'obtention à court et moyen terme des variétés résis-
HULL R., 1988. Polyhedral virions with monopartite RNA geno-
tantes ou tolérantes.
me. Edited by Renate Koenig. New York: Plenum Press: 113-l46.
IlTA, 1986. Annuel Report and Research Highlights 1985.
Remerciements
International Institute of Tropical Agriculture, Ibadan, Nigeria,
130-132.
Nous remercions le ministère néerlandais de la Coopération
JOHN V. T., THOTTAPPJLLY G., 1987. A scoring system for
et de Développement (DGIS) qui a financé ces travaux de
rice yellow virus disease (RYMV) lITA Ibadan, International. Rice
recherches et le Dr Ng (Institut international d'agriculture tro-
Research. Newsletter. 12 (3) : 26.
picale) pour nous avoir fourni une partie de la collection varié-
KONATÉ G., TRAORÉ O., COULIBALY M. M., 1997.
tale de riz du Mali. Nos remerciements vont également à
Characterization of rice yellow mottle virus isolated in Sudano-
E. S. V. Traoré pour son assistance technique.
Sahelian areas. Archives of. Virology, 142, 1117-1124.
OKJOMA S. N. M., SARKARUNG S., 1983. Screening rice
Références bibliographiques
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Tropical. Pest Management, 29(2), 145-147.
ANONYME, 1995. Rapport analytique programme riz irrigué
RECKHAUS P. M., ADAMOU J., 1989. Field observations and
IER-Mali,142 p.
field research on RYMV in the Republic of Niger. Paper presented
at the IRTP-Africa Workshop at ICIPE. Duduvi\\le, Kenya, 20-23
ANONYME, 1994. Rapport analytique programme riz de bas-
fond. Amélioration variétale. 60 p.
March, 1989.
ANONYME, 1991. Rapport de campagne 1989/90. I~ oct 1989-
THOTTAPPJLLY G., ROSSEL H. W., 1993. Evaluation of
30 juin 1990. Service de la protection des végétaux, Division de la
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défense des cultures, Madagascar, 25 p.
Journal of Virology, 9 (1), 65-73.
10
Rev. CAMES - Série A, vol. 01,1999
Sciences et Médecine
'(1)
Le criblage de 270 variétés de riz d'origines diverses
E vis-à-vis des deux pathogroupes sahéliens du
::::J
RYMV en condition d'inoculation mécanique arti-
en
'(1)
ficielle au champ a permis d'identifier parmi les
a: espèces de Oryzasativa. Trois variétés d'excellent
niveau de tolérance appartenant au type japo-
nica pluvial et sept nouvelles variétés à réaction
différentielle. Une seule variété appartenant à Oryza
glaberrima s'est révélée immune aux deux patho-
groupes du virus en l'occurrence TOG 5672.
Cette étude de la résistance du riz au RYMV a
montré qu'une bonne sélection de variétés résis-
tantes ou tolérantes ne peut pas se limiter à l'éva-
luation qualitative basée sur l'expression des symp-
tômes. Le taux de stérilité apparaît comme le carac-
tère le plus discriminant pour la résistance. Ainsi,
des progrès génétiques peuvent être réalisés dans
la sélection pour la résistance ou la tolérance varié-
tale au RYMV en faisant une sélection rigoureuse
au stade maturité en prenant en compte le ren-
dement et ses composantes.
Tableau I. Système d'évaluation de la résistance variétale du riz au RYMV à l'llTA (Institut international d'agri-
culture tropicale).
.Score
Résistance
Coloration foliaire
Rabougrissement
Floraison
Sérodiagnostic
Agar gel
ELISA
0
l
Vert
Nul
Normal
- ou +
HR
Vert
Nul
Normal
+
+
3
R
Vert avec des stries
Négligeable
Normal
++f+++
+++
chlorotiques clairsemées
5
MR
Vert avec une panachure
Faible environ 25 %
Normal ou légèrement
+++
+++
visible fou vert pâle
retardée
7
S
Jaune pâle
Environ 50 %
Retardée et/ou
+++
+++
stérilité partielle
9
HS
Jaune, orange ou
75 %
Pas de floraison ou
+++
+++
plants morts
complètement stérile
R : Résistant; 1 : Immune; HR : Hautement résistant; MR : modérément résistant; S : sensible; HS : Hautement sensible.
Sérodiagnostic; (-); réaction négative; (+); réaction douteuse; (+): réactionfaible : (++) : faible maisréaction claire; (+++) : forteréaction.
Rev. CAMES -Série A; vol. 01,1999
11
Sciences et Médecine
Tableau lIa. Évaluation qualitative et quantitative de la résistance variétale du riz au RYMV en champ.
Groupe
Effets de l'infection sur les caractères agromorphologiques (%)
Teneur en virus
(gg/g de feuille)
Symptômes
Tl
Hl
Tm
Hm
CSE Pd 1000G
NGlPa
TS
PR
12JAI
25JAI
50JAI
Coloration verte
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
2
Coloration verte ou
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
54 ± 9,6
panachure visible
3
Vert/stries
7
6
0
7
0
6
8
8
5-10
0
82 ± 21,7
chlorotiques
4
Jaune/nécrose
40
30
20
40
30
20
20
50-80
60-90
92'+ 37
Tl, Hl : tallage et hauteur à 25 jours après inoculation; Tm, Hm : tallage fertile et hauteur à la maturité; Pd 1000G : poids de
1000grains ; NbGIPa : nombrede grains par panicule; PR : poids récolte; CSE: cycle semis-épiaison' ; écart type.
TabJeau lIb. Regroupement de 270 variétés par niveau de sensibilité.
Groupes
VarIétés
TOG5672
2
TOG 5681 *,TOG 7235*, TOG 7291 *, TOG 5675*, TOG 5674, TOG 7226, TOG 7238, VL 6*, VL 123(a)*
3
IRAT 104*, Moroberekan, FKR 33
4
TOG7115, TOG7116, TOG7117, TOG7119, TOG7187, TOG7226, TOG7231, TOG7248,TOG7249, TOG7236,
TOG7238, TOG7250, TOG7183, TOG7188, TOG7212, TOG7181, TOG7182, TOG7213, TOG7214, TOG7215,
TOG -2-2-4-3BG 90-2, Bouake 189, Kogoni 91-1,Metica, SIK 16-104-2-14,SIK 19-617-1, SIK 19- 617-2, SIK 270-
303-3-2, Naputo chenese, IBT 1740, Lac 2, OS 6, CT 19 TOS 4017,TOS 3554, TOS 6454, TOS 6455, TOS 6457,
TOS 7125,TOS 7184, TOS 7185, TOS 7186, TOS 7189, TOS 7414, TOS 8033 TOS 13431, TOS 14130,TOS, 15229,
TOS 15231, TOS 15232, TOS 15233, TOS 15234, TOS 15235, TOS 15236, TOS 15237, TOS 15239, TOS 15240,
TOS 15242, TOS 15243, TOS 15244 ,TOS 15245, TOS 15246, TOS 15247, TOS 15248, TOS 15249, TOS 16101
TOS 16118, TOS 16119, TOS 16191, TOS 16192, TOS 16193, TOS 16194, Picloutié, Mourou, Gambiaka blanc,
Gambiaka S-43s, N' gon, Nioukou, Naikelaka, Tirvilé, Djaboni-oulé, Tjirefini, Dissi oulé, Sokoundé, Gnagourou,
Niogourouko, Kessouka, Ouattara, Sampéré, Djaboni-djéma, Bentoubala V-], Nankoumou, Rijeto, Tognès Dodingo
(VL 3d), Koungo (48), Kamelekan, Nazie, Tomiela, Sobara, Niofila, Moutegue, KalKan Raaja, Outrou,
Goui-Goui, Maroba, VL 144, Diamana, Alkama, VL 147, Gasanganse, Bornmbele, Pounou-pounou, VL 149,
Moui Samba, VL 38, Torko, Zongoutele, Kamelekan Bambele Damantele, Yours, Kalongue, Bombele rouge, Mariame,
Maloba, VL 123 (b), Baguera, Kofougoutio, Kokamifing, Namogo, Bombele Fele, Honni, Fangwele.
* : Variétés à réaction différentielle; TOG : Tropical Oryza glaberrima ; TOS : Tropical Oryza sativa ; VL : Variété locale du Burkina Faso;
TOX: Tropical Oryza cross; Wita : WARDAIIITA (WestAfricaRiceDevelopment Association! International Institute of Tropical Agriculture).
12
Rev. CAMES - Série A, vol. 01,1999
Sciences et Médecine
. Tableau III. Cinétique d'accumulation du RYMV dans les feuilles de riz.
Vanétés
ViruS (jiglg de feUilles)
GR
12 JAl
25 JAl
50 JAl
RYMV-A RYMV-B
RYMV-A
RYMV-B
RYMV-A
RYMV-B
TOG5672
1
Moroberekan
40
60
125
3,4
IRAT 104
90
65
70
BG 90-2
70
112
nt
nt
Kogoni 91-1
98
100
nt
nt
Bouaké 189
100
225
nt
nt
Wita 7
70
85
150
Wita 8
90
30
70
85
Wita 9
70
140
90
Metica
65
80
65
Mourou
50
65
80
90
Naputo chenese
40
50
31
N'fite
50
65
40
TOS 13431
50
90
140
TOS 16192
31
70
90
TOS 15249
65
50
125
TOG7291
65
40
2,3,4
TOG7235
60
50
TOG7238
70
40
TOG7226
50
50
TOS 3554
50
125
TOS 16101
50
200
TOS 8033
31
40
FKR33
65
70
TOG 5681
25
2
TOG5675
52
55
TOG5674
52
40
VL 123 (a)
40
31
A et 8: pathogroupes de RYMV ; JAl: jours après inoculation; (-) : non détectable ; GR : groupe de résistance.
Rev. CAMES - Série A, vol. 01, 1999
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